Thelohanellus kitauei
|
|
| Thelohanellus kitauei | |
|---|---|
| Świeże myksospory T. kitauei z rozmazu skóry karpia pospolitego; z Zhai i in. 2016; pasek wielkości 10 μm. | |
| Klasyfikacja naukowa | |
| Królestwo: | |
| Gromada: | |
| podtyp: | |
| Klasa: | |
| Zamówienie: | |
| Rodzina: | |
| Rodzaj: | |
| Gatunek: |
T. kitauei
|
| Nazwa dwumianowa | |
|
Thelohanellus kitauei |
|
Thelohanellus kitauei to endopasożyt myksozoiczny zidentyfikowany jako czynnik wywołujący chorobę olbrzymio-torbielowatą jelit (IGCD) karpia pospolitego Cyprinus carpio . Gatunek został po raz pierwszy zidentyfikowany w Japonii w 1980 roku, a później formalnie opisany przez Egusę i Nakajimę. Następnie Fan zgłosił pasożyta w Chinach, a następnie kilka innych doniesień o karpiach i karpiach Koi w Chinach i Korei. Doniesienia dotyczyły infekcji jelitowej, obrzęku i wycieńczenia ryb w wyniku zablokowania przewodu pokarmowego przez cysty olbrzymie. Jelito karpia uważano za jedyne miejsce zakażenia T. kitauei aż Zhai i in. opisali duże cysty T. kitauei w skórze, z morfologicznie podobnymi i molekularnie identycznymi zarodnikami. T. kitauei została uznana za najbardziej szkodliwą chorobę karpia hodowlanego w Azji, ponieważ rocznie zabija się około 20% karpia hodowlanego. W 2014 roku zsekwencjonowano genom T. kitauei , aw 2016 roku stwierdzono, że jego cykl życiowy obejmuje skąposzczeta Branchiura sowerbyi . Zainfekowane skąposzczety zostały po raz pierwszy odkryte na Węgrzech i wzbudziły obawy związane z wprowadzeniem T. kitauei do europejskich stawów hodowlanych karpia, ponieważ uważano go za gatunek endemiczny dla Azji. Jednak pokrewna choroba (IGCD) nie została jeszcze zgłoszona w Europie.
Taksonomia
Obowiązująca nazwa taksonomiczna: Thelohanellus kitauei Egusa & Nakajima, 1981.
Młodszy synonim: Thelohanellus xinyangensis Xie, Gong, Xiao, Guo, Li et Guo, 2000.
Koło życia
Cykl życiowy T. kitauei obejmuje dwóch żywicieli. Żywicielem ostatecznym jest Branchiura sowerbyi (Oligochaeta, Naididae, Branchiurinae), w którym tworzą się i uwalniają z przewodu pokarmowego robaków zarodniki aktynospory typu aurantiactinomyxon. Te aktynospory infekują następnie żywiciela pośredniego, karpia pospolitego, a po namnażaniu się pasożyta w jelicie karpia tworzą się zarodniki myksospor. Myxospory są następnie uwalniane z kałem żywiciela rybnego lub po jego śmierci i pobierane przez B. sowerbyi podczas żerowania osadem.
Patologia i objawy kliniczne
W jelitach chorego karpia rozwijają się duże cysty zawierające zarodniki T. kitauei . Wielkość torbieli waha się od 2 cm do 3,6 cm średnicy. Histopatologia wskazuje, że T. kitauei najpierw atakuje błonę podśluzową jelita żywiciela, a następnie przemieszcza się do warstw błony śluzowej, gdzie tworzą się zarodniki, przy czym zarodniki dostają się do jamy ciała żywiciela po rozerwaniu warstw błony śluzowej. Dotknięte stada ryb mogą cierpieć z powodu śmiertelności sięgającej 100%. Ryby umierają z głodu, ponieważ wchłanianie składników odżywczych i przechodzenie pokarmu przez zainfekowane jelita jest ograniczone. Infekcje skóry powodują duże, nieregularne zmiany przypominające guzy z cystami z zarodnikami. Powodują one złuszczanie naskórka i warstwy gąbczastej.
Uderzenie
W 2010 roku w Chinach IGCD doprowadził do strat ekonomicznych w wysokości około 50 milionów USD.
Diagnoza
Torbiele jelitowe są duże i dobrze widoczne gołym okiem (ryc. 2), duże są też cysty na skórze. Myksospory w cystach powinny pasować do opisów Egusa i Nakajima, 1981 lub Zhai et al. 2016. Są to worki przypominające balony w kształcie jajka, o średniej wielkości 33,4 μm na 15,0 μm. Sekwencje 18S rDNA są dostępne w Genbank pod numerami dostępu KU664644, JQ690367, HM624024, MH329616, KR872638, KU664643, GQ396677, MF536693; dane genomu są dostępne pod numerem dostępu Bioproject PRJNA193083. Test wykrywania qPCR został opracowany przez Seo i wsp., ale jego specyficzność wymaga potwierdzenia, ponieważ blisko spokrewnione gatunki wykazują jedynie niewielką rozbieżność sekwencji 18S rDNA.
Zabiegi
Obecnie nie ma środków na myksozoany u ryb przeznaczonych do spożycia przez ludzi.
Inne strategie kontroli
Nie zidentyfikowano żadnych innych strategii kontroli.
Badania
Większość badań nad tym pasożytem przeprowadza się w Japonii, Chinach i Korei, gdzie IGCD wpływa na dużą liczbę stad karpia. W ramach finansowanego ze środków UE projektu ParaFishControl w ramach programu Horyzont 2020 odkryto bezkręgowego żywiciela T. kitauei na Węgrzech, chociaż uważa się, że kraj ten jest obszarem hodowli karpia wolnym od IGCD. Trwające badania w ramach tego projektu badają obecność T. kitauei w próbkach środowiskowych w stawach hodowlanych karpi w różnych krajach Europy i koncentrują się na wykrywaniu potencjalnie różnych miejsc infekcji u ryb, ponieważ badania przesiewowe jelit na dużą skalę nie ujawniły T. kitauei infekcji, nawet w miejscach, w których wykryto pasożyta w próbkach środowiskowych.