Belonolaimus longicaudatus

Sting nicieni
Klasyfikacja naukowa
Królestwo:	Animalia
Gromada:	nicienie
Klasa:	Secernentea
Zamówienie:	Tylenchida
Rodzina:	Belonolaimidae
Rodzaj:	Belonolaimus
Gatunek:	B. longicaudatus
Nazwa dwumianowa
	Belonolaimus longicaudatus; Rau (1958)

Belonolaimus longicaudatus ( nicień żądlący ) jest pospolitym pasożytem traw i innych roślin uprawnych oraz produktów. Jest najbardziej niszczycielskim szkodnikiem nicieni trawy darniowej , a także atakuje szeroką gamę upraw owocowych, warzywnych i włóknistych, takich jak owoce cytrusowe , bawełna , rośliny ozdobne i pastewne . Sting nicienie są wędrownymi ektopasożytami korzeni . Jest dobrze ugruntowany na wielu polach golfowych i stanowi problem w zarządzaniu murawą . Nicienie żądlące występują tylko na bardzo piaszczystych glebach. Nie może rozmnażać się na glebach cięższych lub gliniastych .

Historia

Rodzaj został pierwotnie opisany przez Steinera w 1942 r., ale z powodu II wojny światowej praca została opublikowana dopiero w 1949 r. ( B. gracilis , Steiner 1949). Rau (1958) udoskonalił opis anatomiczny i doprecyzował rodzaj, zauważając, że istnieje kilka gatunków, z których najpowszechniejszym jest B. longicaudatus .

Opis

Długi nicień w porównaniu z innymi nicieniami pasożytniczymi na roślinach o długości 2–3 mm zarówno dla samca, jak i samicy. Opis: obszar wargi jest półkulisty, podzielony obustronnie, grzbietowo i brzusznie z rowkami na cztery główne płaty (dwa podgrzbietowe i dwa podbrzuszne), z których każdy ma sześć lub więcej poziomych prążków; dwa mniejsze płaty (boczne) z otworami amfidowymi. Obszar warg jest generalnie oddzielony od ciała głębokim zwężeniem, ale w niektórych populacjach może to być mniej zaznaczone. Pole boczne jest zaznaczone pojedynczym nacięciem rozciągającym się od podstawy obszaru wargi do końca ogona. Mandryn ma długość 100-140 mikrometrów; jest bardzo cienki i elastyczny z zaokrąglonymi pokrętłami. Otwór wydalniczy znajduje się za bańką środkową. Gruczoł przełykowy jest podobny do płata i rozciąga się do przodu nad jelitem. Ogon ma długość 115-189 mikrometrów i zaokrąglony koniec.

Samce: Zarys okolic warg jest bardziej spłaszczony po bokach niż u samic, ale układ płatków jest podobny. Jądro jest wyciągnięte. Spikule są łukowate z brzusznymi kołnierzami, a dalsze końce są spiczaste małymi nacięciami wierzchołkowymi. Gubernaculum , a ogon otacza kaletka.

Kobieta: Srom jest poprzeczną szczeliną, a wargi sromowe nie wystają do pochwy, która zazwyczaj ma przeciwstawną parę stwardniałych części w widoku bocznym. Istnieją dwa jajniki, które są amfidelficzne i rozciągnięte. Obecna jest również spermateka.

Dystrybucja i znaczenie gospodarcze

Nicienie Sting są endemiczne dla południowo-wschodnich Stanów Zjednoczonych i są zdolne do rozmnażania się tylko na glebach piaszczystych. Fakt ten jest głównym czynnikiem ograniczającym w tym rozmieszczeniu nicieni. Nicienie odnotowano we wszystkich południowo-wschodnich stanach Zatoki Perskiej oraz dodatkowo w Kansas, Oklahomie, New Jersey, Connecticut i Arkansas (Robbins i Barker, 1974). Niedawno został zgłoszony jako szkodnik na kalifornijskich polach golfowych z powodu transportu porażonych podkładek. Jest głównym szkodnikiem pól golfowych (Luc et al. 2010), truskawek (Noling 2012), bawełny (Crow et al. 2005), kukurydzy (Perry i Rhodes, 1982) oraz owoców cytrusowych (Duncan et al. 1996). Duży rozmiar nicienia w połączeniu z jego zdolnością do wielokrotnego żerowania z miejsca na miejsce w systemie korzeniowym wielu upraw sprawia, że jest to groźny szkodnik. W przypadku wielu upraw odnotowano zmniejszenie plonów i znaczne zmniejszenie wielkości roślin.

Rozmnażanie i cykl życia

Cykl życiowy trwa około 24–28 dni, a optymalna temperatura wynosi 25–30 ° C (77–86 ° F) (Huang i Becker, 1999; Robbins i Barker, 1974). Nicienie przeżywają ekstremalne temperatury lub susze, wnikając głębiej w glebę (Robbins i Barker, 1974). Wszystkie stadia robakowate żywią się korzeniami, a karmienie jest wymagane do łączenia się w pary i rozmnażania. Samice muszą być zapłodnione przez samca, aby mogły powstać zdolne do życia jaja (Huang i Becker, 1999).

Relacja żywiciel-pasożyt

Nicień żeruje jako ektopasożyt, najczęściej w miejscu podziału komórki i wydłużenia korzenia (Huang i Becker, 1997). Długi mandryn pozwala nicieniowi żerować na wewnętrznej korze i endodermie. Żerowanie na końcach korzeni powoduje ich skracanie i karłowatość (Crow i Han, 2005). W korzeniach kukurydzy może wystąpić pęcznienie wierzchołków korzeni z powodu powtarzających się prób wytworzenia przez roślinę nowych gałęzi korzeniowych. W bawełnie żerowanie może powodować uszkodzenia, które ostatecznie powodują opasywanie korzeni.

Kierownictwo

W przeszłości bromek metylu był substancją chemiczną najczęściej stosowaną do zwalczania nicieni, jednak jego planowane wycofanie z rynku 1 stycznia 2015 r. (Rosskoph et al. 2005) doprowadziło do testowania nowych chemikaliów i biopestycydów. Endospory Pasteuria sp. zostały przetestowane na trawie darniowej z mieszanym powodzeniem (Luc et al. 2010). Szerokie zastosowanie różnych chemikaliów w przemyśle truskawkowym i traw darniowych daje wgląd w przyszłość chemicznej kontroli nicieni, która z pewnością będzie wymagała wielopłaszczyznowego podejścia. Wiodącym kandydatem do większości kontroli jest Telone (Noling 2012). Płodozmian jest ogólnie postrzegany jako nieopłacalny ekonomicznie ze względu na szeroki zakres żywicieli szkodników.

Lista hostów

Lista gospodarzy z: Noling, JW (2012) „Zarządzanie nicieniami w truskawkach”. Departament Entomologii i Nematologii, Florida Cooperative Extension Service, Institute of Food and Agricultural Sciences, University of Florida.

* oznacza zmienną reakcję żywiciela na geograficzne/fizjologiczne rasy nicieni jadowitych.

Uprawy darniowe, polowe i pastewne

Bluegrass, mietlica, stonoga, św. Augustyna, bahiagras, trawa bermudzka, pangola, kostrzewa, kukurydza, owies, proso, żyto, pszenica, orzeszki ziemne*, koniczyna, bawełna, soja, jęczmień, Lespedeza .

Uprawy owoców i warzyw

Fasola, marchew, seler, kukurydza, cowpea, bakłażan, cebula*, groch, cytrusy*, truskawka*, kapusta*, kantalupa, kalafior, cykoria, sałata, pomidor, rzepa, okra*, ogórek*, fasolka szparagowa, dynia, papryka, słodki ziemniak*, ziemniak.

Uprawy okrywowe

Sesbania , sorgo / trawa sudańska , groch żelazisty , fasola mung , groch gołębi , wyka włosowata , wyka zwyczajna .

Wykorzystanie roślin okrywowych ubogich lub innych niż rośliny żywicielskie w kolejności płodozmianu może w niektórych przypadkach zapewnić skuteczne podejście do zwalczania nicieni. Cztery strączkowe rośliny okrywowe, które można przystosować do zarządzania populacjami glebowymi nicieni żądlących lub nicieni korzeniowych, obejmują wspięgę żelazną ( Vigna unguiculata cv. „Iron Clay”), konopie siewne ( Crotalaria juncea ), indygo włochate ( Indigofena hirsuta ) i wyka amerykańska ( Aeschynomene amerykański ). Sorgo jest również popularną rośliną okrywową przywracającą duże ilości materii organicznej w glebie, ale jest dobrym żywicielem dla nicieni, ale nie dla sęków korzeniowych. Większość drobnych zbóż powszechnie stosowanych jako ozime rośliny okrywowe w środkowej i północnej Florydzie, takich jak żyto, jęczmień, pszenica lub owies, może sprzyjać ograniczonej reprodukcji nicieni korzeniowych.

Chwasty pospolite

Krab trawa , trawa bermudzka , kostrzewa , ćwiartka jagnięca * , cudweed , koper włoski , trawa Johnsona , beggarweed , ambrozja , dzika marchew , igła hiszpańska .

Biedni gospodarze

Tytoń, arbuz*, szparagi, papryka ostra, konopie siewne , indygo włochate , Crotalaria , fasola aksamitna *, Bidens , skrzyp pospolity , babka lancetowata , szkarłatka , sandburs , kąkol *, zielsko biszkoptowe , szczaw, czosnek niedźwiedzi, dąb jerozolimski .

Commonwealth Institute of Helminthology, opis nicieni pasożytniczych roślin , zestaw 3, nr 40 (1974)
Crow WT, Dickson DW, Weingartner DP, McSorley R, Miller GL. 2000. „Zmniejszenie plonu i uszkodzenie korzeni bawełny wywołane przez Belonolaimus longicaudatus ”. Dziennik Nematologii . Czerwiec, 32 (2): s. 205–209.
Crow, WT, DP Weingartner, R McSorley i DW Dickson. 2000. „Dynamika populacji Belonolaimus longicaudatus w systemie produkcji bawełny”. Journal of Nematology 32: s. 210–214.
Crow WT, Han HR. „Żądło nicienia”. 2005 Instruktor Ochrony Roślin : doi : 10.1094/PHI-I-2005-1208-01 .
Duncan LW, Noling JW, Inserra RN i D Dunn. 1996. „Wzory przestrzenne Belonolaimus spp. Wśród iw Citrus Orchardson Florida's Central Ridge”. Journal of Nematology , 28 (3): s. 352–359.
Huanga i Beckera. 1997. „Kultura in vitro i zachowania żywieniowe Belonolaimus Iongicaudatus na wyciętych korzeniach Zea mays ”. Dziennik Nematologii . 29 (3): s. 411–415.
Huang, X i JO Becker. 1999. „Cykl życiowy i zachowanie godowe Belonolaimus longicaudatus w kulturze gnotobiotycznej”. Journal of Nematology 31: s. 70–74.
Luc JE, Crow WT, McSorley R, Giblin-Davis RM. „Tłumienie Belonolaimus longicaudatus za pomocą endospor Pasteuria sp. wytwarzanych in vitro ”. Nematropika . 2010 a;40: s. 217–225.
Noling, JW 2012. „Zarządzanie nicieniami w truskawkach”. Departament Entomologii i Nematologii, Florida Cooperative Extension Service, Institute of Food and Agricultural Sciences, University of Florida.
Perry, VG i H. Rhoades.1982. „Rodzaju Belonolaimus ”. s. 144–149 w red. RD Riggs, Nematology in the Southern Region of the United States . Biuletyn serii Southern Cooperative 276. Fayetteville, AR: University of Arkansas Agricultural Publications.
Rau, GJ 1958. „Nowy gatunek nicienia żądlącego”. Proceedings of the Helminthological Society of Washington . 25: s. 95–98.
Robbins, RT i KR Barker. 1973. „Porównania zasięgu żywiciela i reprodukcji między populacjami Belonolaimus longicaudatus z Karoliny Północnej i Georgii”. Reporter o chorobach roślin . 57: s. 750–754.
Robbins, RT i KR Barker. 1974. „Wpływ rodzaju gleby, wielkości cząstek, temperatury i wilgotności na rozmnażanie Belonolaimus longicaudatus ”. Journal of Nematology 6: s. 1–6.
Rosskopf, EN, Chellemi, DO, Kokalis-Burelle, N i GT Church. 2005. „Alternatywy dla bromku metylu: perspektywa Florydy”. Plant Health Progress , Amerykańskie Towarzystwo Fitopatologiczne. doi : 10.1094/PHP-2005-1027-01-RV
Smart, GC i KB Nguyen. „Nematody żądlące i szydło”. s. 627–668 w WR Nickle, red., Manual of Agricultural Nematology . Marcel Dekker Inc., Nowy Jork.
Steiner, G (1949) „Nematody roślinne, o których hodowca powinien wiedzieć”. Soil Science Society of Florida, Proceeding . 4-B: s. 72–117.

Linki zewnętrzne

Nemaplex, Uniwersytet Kalifornijski – Belonolaimus longicaudatus