KMS10
KMS10 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Identyfikatory | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
, DXS8237E, GPATC9, GPATCH9, S1-1, TARPS, ZRANB5, białko motywu wiążącego RNA 10 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
identyfikatorów zewnętrznych | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Wikidane | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Motyw wiążący RNA 10 jest białkiem kodowanym przez gen RBM10 . Ten gen mapuje się na chromosomie X w Xp11.23 u ludzi. RBM10 to regulator alternatywnego splicingu. Splicing alternatywny to proces związany z ekspresją genów w celu wytworzenia wielu izoform białek z jednego genu, tworząc w ten sposób różnorodność funkcjonalną i złożoność komórkową. RBM10 wpływa na ekspresję wielu genów, uczestnicząc w różnych procesach i szlakach komórkowych, takich jak proliferacja i apoptoza komórek. Jego mutacje są związane z różnymi ludzkimi chorobami, takimi jak zespół TARP, wrodzona choroba sprzężona z chromosomem X u mężczyzn powodująca śmiertelność przed lub po urodzeniu oraz różne nowotwory u dorosłych.
Gen i białko
Gen RBM10 rozciąga się na około 41,6 kb i zawiera 24 eksony. Ten gen jest poddawany inaktywacji X, w której jeden z dwóch genów RBM10 w komórkach żeńskich jest transkrypcyjnie wyciszany przez tworzenie heterochromatyny.
Białka RBM stanowią dużą rodzinę białek wiążących RNA (RBP). Istnieje 52 białek RBM (HGNC: HUGO Gene Nomenclature Committee), z których każde zawiera od jednej do kilku domen wiążących RNA, zwanych motywami rozpoznawania RNA (RRM). RBM10 zawiera dwa RRM (RRM1 i RRM2) i inne domeny, takie jak dwa palce cynkowe (ZnF), powtórzenie oktameru (OCRE), trzy sygnały lokalizacji jądrowej (NLS) i domenę bogatą w glicynę (łatka G). Sekwencja aminokwasowa (aa) RBM10 jest zachowana wśród ssaków. Ludzka izoforma 1 RBM10 ma 96% i 97% homologii sekwencji odpowiednio z myszami i szczurami, co wskazuje, że funkcje molekularne RBM10 są zasadniczo takie same u ludzi i gryzoni.
RBM10 ma wiele izoform, generowanych przez alternatywne zdarzenia splicingu pierwotnego transkryptu RBM10. Główne izoformy, 1–4, mogą zawierać sekwencję egzonu 4 (77 reszt) i/lub resztę Val odpowiadającą ostatniemu kodonowi eksonu 10. Izoforma 1 (930 reszt) zawiera zarówno sekwencję eksonu 4, jak i V354, podczas gdy izoforma 4 (929 reszt) nie zawiera tej reszty waliny. Podobnie ekson 4 – minus izoforma 3 (853 reszt) zawiera V277, podczas gdy izoforma 2 (852 reszt) nie. Izoforma 5 (995 reszt) ma dłuższy N-koniec o długości 65 aminokwasów w porównaniu z izoformą 1. Ponadto zautomatyzowana analiza obliczeniowa przy użyciu narzędzia do przewidywania genów Gnomon (gen NCBI) wykazała, że może istnieć więcej niż 10 różnych RBM izoformy.
Funkcjonować
RBM10 jest wszechobecny w prawie każdym typie komórek, zarówno rosnących, jak i nieaktywnych (UniProtKB-P98175 [człowiek] i Q99KG3 [mysz]; The Human Protein Atlas). Na ogół ulega silniejszej ekspresji w komórkach aktywnie transkrybujących.
W regulacji alternatywnego splicingu RBM10 promuje wykluczenie eksonu, zwanego kasetą lub eksonem alternatywnym, z docelowych pre-mRNA i rzadziej innych alternatywnych zdarzeń splicingowych, takich jak wybór alternatywnego miejsca składania 5'. W procesie pomijania eksonów RBM10 wiąże się w pobliżu miejsc składania 3' i 5' egzonów kasety i zakłóca rozpoznawanie i/lub parowanie miejsc składania, wzmacniając w ten sposób parowanie miejsc składania dystalnych względem eksonów kasety, co ostatecznie prowadzi do wykluczenia eksonów wraz z flankującymi intronami w górę iw dół.
Różnorodność docelowych RNA związanych przez RBM10 w komórkach sugeruje, że bierze on udział w różnych procesach metabolicznych, takich jak fosforylacja oksydacyjna; szlaki związane z proliferacją komórek, apoptozą, adhezją komórek i reorganizacją aktyny/cytoszkieletu; oraz różne choroby, takie jak nowotwory i choroby neurodegeneracyjne. Dane te wraz z wszechobecną ekspresją RBM10 wskazują, że jest to podstawowy składnik komórkowy uczestniczący w różnych procesach komórkowych. Oprócz alternatywnej regulacji splicingu, RBM10 bierze udział w innych reakcjach. Niektóre przykłady to poliadenylacja sercowych pre-mRNA regulatorów przeciw przerostowi, gdzie działa jako współregulator polimerazy STAR-poli(A), stabilizacja mRNA receptora angiotensyny II poprzez wiązanie się z jego 3ʹ-UTR, let-7g miRNA biogeneza poprzez interakcję z jego prekursorem, stabilizację p53 poprzez wiązanie z jego negatywnym regulatorem, MDM2, zatrzymanie cyklu komórkowego i reakcje przeciwwirusowe.
RBM10 lokalizuje się w nukleoplazmie, gdzie zachodzi transkrypcja i splicing, a także w przedziałach jądrowych bez błony zwanych ciałami jądrowymi S1-1 (S1-1 NB). Liczby (ok. 10–40 na jądro) i rozmiary (ok. 0,5 µm) NB S1-1 różnią się w zależności od typu komórki i warunków komórkowych. Kiedy zmniejsza się transkrypcja polimerazy RNA II, RBM10 w nukleoplazmie jest sekwestrowany w NB S1-1, które stają się większe i kuliste; po przywróceniu transkrypcji RBM10 i NB S1-1 powracają do swoich stanów początkowych. NB S1-1 często pokrywają się z plamkami jądrowymi (znanymi również jako plamki splicingowe lub skupiska granulek międzychromatynowych), co najwyraźniej wskazuje na ścisły związek funkcjonalny między tymi domenami jądrowymi, tj. alternatywną regulację splicingu i reakcję splicingu.
Rozporządzenie
U kobiet większość genów na jednym z dwóch chromosomów X jest transkrypcyjnie wyciszana przez tworzenie heterochromatyny, a RBM10 jest poddawany tej inaktywacji X. Ponadto istnieją mechanizmy kontrolujące podwyższone poziomy komórkowe RBM10. RBM10 automatycznie reguluje swój nadeksprymowany pre-mRNA przez alternatywne składanie w celu wykluczenia egzonu 6 lub 12, który generuje przedwczesny kodon stop w transkryptach, co prowadzi do ich degradacji poprzez rozpad mRNA za pośrednictwem nonsensów (NMD). Kiedy zmniejsza się transkrypcja polimerazy RNA II, RBM10 jest sekwestrowany w S1-1 NB, aż do przywrócenia transkrypcji. Ponadto RBM10 podlega modyfikacjom potranslacyjnym: fosforylacji w wielu miejscach w odpowiedzi na różne bodźce i zmiany warunków komórkowych (UniProtKB-P98175; PhosphoSitePlus RBM10), a także wszechobecności, acetylacji i metylacji. Jednak molekularne i biologiczne znaczenie tych różnych modyfikacji potranslacyjnych RBM10 nie jest dobrze poznane.
Znaczenie kliniczne
Mutacje w RBM10 są związane z różnymi chorobami człowieka. Fenotypy spowodowane mutacjami RBM10 różnią się w zależności od etapów rozwoju i dotkniętych tkanek. Typowymi przykładami są zespół TARP, sprzężona z chromosomem X plejotropowa wada rozwojowa u noworodków oraz różne nowotwory, takie jak gruczolakorak płuc (LUAD) i rak pęcherza moczowego (BLCA) u dorosłych. Choroby te częściej występują u mężczyzn niż u kobiet. Jednym z powodów jest różnica w liczbie kopii genu RBM10 w komórce (jedna w komórkach męskich i dwie w komórkach żeńskich). Mutacje w RBM10 występują w całej cząsteczce, a wiele z nich to mutacje zerowe. Zespół TARP jest na ogół śmiertelny przed lub po urodzeniu. Jednak zgłaszano, że pacjenci w wieku 11, 14 i 28 lat unikają tych zerowych mutacji. Mutacje RBM10 zidentyfikowano również w innych nowotworach, takich jak rak nerki, rak trzustki, rak jelita grubego, rak tarczycy, rak piersi, rak dróg żółciowych, rak prostaty oraz oponiaki i gwiaździaki guza mózgu.
NUMB jest najlepiej zbadanym efektorem RBM10. RBM10 promuje pomijanie eksonu 9 transkryptu NUMB, wytwarzając izoformę NUMB, która powoduje ubikwitynację, po której następuje proteasomalna degradacja receptora Notch, a tym samym hamuje szlak proliferacji komórek sygnalizacyjnych Notch. W różnych nowotworach mutacje RBM10, które dezaktywują lub zmniejszają jego aktywność regulacyjną w zakresie alternatywnego splicingu, zwiększają produkcję izoformy eksonu 9, w tym izoformy NUMB, która promuje proliferację komórek nowotworowych poprzez szlak Notch.
RBM10 hamuje proliferację komórek i promuje apoptozę. Dlatego jest powszechnie uważany za supresor nowotworów. Jednak w niektórych przypadkach może wywierać przeciwną funkcję onkogenną, działając jako promotor nowotworu lub wzmacniacz wzrostu, prawdopodobnie z powodu kontekstów komórkowych składających się z różnych składników i aktywnych szlaków. Typowym tego przykładem są pacjenci z gruczolakorakiem przewodowym trzustki (PDAC) z mutacjami RBM10, u których wskaźnik przeżycia jest znacznie wyższy niż ogólny 5-letni wskaźnik przeżycia PDAC wynoszący mniej niż 7–8%.
Paralogi i splicing sieci
RBM5 i RBM6 są paralogami RBM10. Zostały wygenerowane przez duplikacje genów podczas ewolucji genomu. Na ogół działają jako supresory nowotworów, a ich mutacje są często identyfikowane w raku płuc. RBM5, RBM6 i RBM10 regulują splicing alternatywny i ogólnie działają na różne RNA; jednak w niektórych przypadkach działają na ten sam podzbiór RNA, prawdopodobnie wywołując efekty synergistyczne lub antagonistyczne. Istnieje regulacja krzyżowa między RBM5 i RBM10; RBM10 obniża poziomy transkryptu RBM5 przez NMD sprzężony z alternatywnym splicingiem. Ponadto zaburzenie RBM10 (knockdown lub nadekspresja) powoduje zmiany splicingu w wielu regulatorach splicingu, w tym RBM5, a także znacząco wpływa na ekspresję innych regulatorów splicingu, w tym samego RBM10. Ponadto pierwotne transkrypty RBM10 są poddawane alternatywnemu splicingowi w kilku egzonach przez niezidentyfikowane regulatory splicingu, co prowadzi do wytworzenia wielu izoform RBM10. Dane te sugerują istnienie alternatywnej sieci splicingu utworzonej przez RBM5, RBM6 i RBM10, a także inne regulatory splicingu. Oczekuje się, że badania nad takimi sieciami przyczynią się do lepszego zrozumienia homeostazy transkryptomicznej regulowanej przez splicing oraz molekularnego i biologicznego znaczenia RBM10 w komórkach.
RBM10 reguluje setki genów. Dalsze badania nad różnymi procesami i szlakami, w których pośredniczy RBM10, mogą pomóc w wyjaśnieniu patogenezy i progresji chorób spowodowanych mutacjami RBM10 oraz mechanizmów przeciwstawnych działań RBM10 jako supresora nowotworu, aw niektórych przypadkach promotora nowotworu, i dostarczyć wskazówek dla lepszego leczenia chorób.
Notatki
Dalsza lektura
- Maruyama K, Sugano S (styczeń 1994). „Oligo-capping: prosta metoda zastąpienia struktury czapeczki eukariotycznych mRNA oligorybonukleotydami”. gen . 138 (1–2): 171–4. doi : 10.1016/0378-1119(94)90802-8 . PMID 8125298 .
- Suzuki Y, Yoshitomo-Nakagawa K, Maruyama K, Suyama A, Sugano S (październik 1997). „Konstrukcja i charakterystyka biblioteki cDNA wzbogaconej o pełnej długości i wzbogaconej o koniec 5'”. gen . 200 (1–2): 149–56. doi : 10.1016/S0378-1119(97)00411-3 . PMID 9373149 .
- Hartley JL, Temple GF, Brasch MA (listopad 2000). „Klonowanie DNA przy użyciu rekombinacji specyficznej dla miejsca in vitro” . Badania genomu . 10 (11): 1788–95. doi : 10.1101/gr.143000 . PMC 310948 . PMID 11076863 .
- Wiemann S, Weil B, Wellenreuther R, Gassenhuber J, Glassl S, Ansorge W i in. (marzec 2001). „W kierunku katalogu ludzkich genów i białek: sekwencjonowanie i analiza 500 nowych kompletnych białek kodujących ludzkie cDNA” . Badania genomu . 11 (3): 422–35. doi : 10.1101/gr.GR1547R . PMC 311072 . PMID 11230166 .
- Li J, Hawkins IC, Harvey CD, Jennings JL, Link AJ, Patton JG (listopad 2003). „Regulacja alternatywnego splicingu przez SRrp86 i jego białka oddziałujące” . Biologia molekularna i komórkowa . 23 (21): 7437–47. doi : 10.1128/MCB.23.21.7437-7447.2003 . PMC 207616 . PMID 14559993 .
- Beausoleil SA, Jędrychowski M, Schwartz D, Elias JE, Villén J, Li J, et al. (sierpień 2004). „Charakterystyka na dużą skalę fosfoprotein jądrowych komórek HeLa” . Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America . 101 (33): 12130-5. Bibcode : 2004PNAS..10112130B . doi : 10.1073/pnas.0404720101 . PMC 514446 . PMID 15302935 .
- Ballif BA, Villén J, Beausoleil SA, Schwartz D, Gygi SP (listopad 2004). „Analiza fosfoproteomiczna rozwijającego się mózgu myszy” . Proteomika molekularna i komórkowa . 3 (11): 1093–101. doi : 10.1074/mcp.M400085-MCP200 . PMID 15345747 .
- Wiemann S, Arlt D, Huber W, Wellenreuther R, Schleeger S, Mehrle A i in. (październik 2004). „Od ORFeome do biologii: funkcjonalny rurociąg genomiki” . Badania genomu . 14 (10B): 2136–44. doi : 10.1101/gr.2576704 . PMC 528930 . PMID 15489336 .
- Rual JF, Venkatesan K, Hao T, Hirozane-Kishikawa T, Dricot A, Li N i in. (październik 2005). „W kierunku mapy w skali proteomu sieci interakcji białko-białko człowieka”. Natura . 437 (7062): 1173-8. Bibcode : 2005Natur.437.1173R . doi : 10.1038/natura04209 . PMID 16189514 . S2CID 4427026 .
- Mehrle A, Rosenfelder H, Schupp I, del Val C, Arlt D, Hahne F i in. (styczeń 2006). „Baza danych LIFEdb w 2006 roku” . Badania kwasów nukleinowych . 34 (problem z bazą danych): D415-8. doi : 10.1093/nar/gkj139 . PMC 1347501 . PMID 16381901 .
- Martínez-Arribas F, Agudo D, Pollán M, Gómez-Esquer F, Díaz-Gil G, Lucas R, Schneider J (kwiecień 2006). „Dodatnia korelacja między ekspresją genów RBM chromosomu X (RBMX, RBM3, RBM10) a proapoptotycznym genem Bax w ludzkim raku piersi”. Journal of Cellular Biochemistry . 97 (6): 1275–82. doi : 10.1002/jcb.20725 . PMID 16552754 . S2CID 9804734 .
- Olsen JV, Blagoev B, Gnad F, Macek B, Kumar C, Mortensen P, Mann M (listopad 2006). „Globalna, in vivo i specyficzna dla miejsca dynamika fosforylacji w sieciach sygnalizacyjnych” . komórka . 127 (3): 635–48. doi : 10.1016/j.cell.2006.09.026 . PMID 17081983 . S2CID 7827573 .