Haemonchus contortus

Haemonchus contortus
Tych 11 dorosłych samic Haemonchus contortus pobrano od jednej owcy zakażonej pojedynczym szczepem tego gatunku robaków.
Jajo Haemonchus contortus
Klasyfikacja naukowa
Królestwo:	Animalia
Gromada:	nicienie
Klasa:	Chromadorea
Zamówienie:	Rhabditida
Rodzina:	Trichostrongylidae
Rodzaj:	Hajmonchus
Gatunek:	H. contortus
Nazwa dwumianowa
Haemonchus contortus (Rudolphi, 1803) Cobb, 1898
Synonimy
Haemonchus placei Place, 1893 (blisko spokrewnione gatunki)

Haemonchus contortus , znany również jako robak fryzjerski , jest bardzo pospolitym pasożytem i jednym z najbardziej patogennych nicieni przeżuwaczy . Dorosłe robaki przyczepiają się do trawieńca i żywią się krwią. Pasożyt ten jest odpowiedzialny za anemię , obrzęki i śmierć zarażonych owiec i kóz , głównie latem w ciepłym, wilgotnym klimacie.

Samice mogą złożyć ponad 10 000 jaj dziennie, które przechodzą od zwierzęcia żywiciela z kałem . Po wykluciu się z jaj larwy H. contortus linieją kilka razy, w wyniku czego powstaje zakaźna dla zwierząt forma L3. Żywiciel zjada te larwy podczas wypasu. Larwy L4, powstałe po kolejnym linieniu, i dorosłe robaki wysysają krew z trawieńca zwierzęcia, potencjalnie powodując anemię i obrzęk, które ostatecznie mogą doprowadzić do śmierci.

Infekcja, zwana hemonchozą, powoduje duże straty ekonomiczne dla rolników na całym świecie, zwłaszcza tych żyjących w cieplejszym klimacie. Środki przeciwrobacze stosuje się w zapobieganiu i leczeniu tych i innych infekcji robakami, ale odporność pasożytów na te chemikalia rośnie . Niektóre rasy, takie jak koza karłowata z Afryki Zachodniej i bydło rasy N'Dama, są bardziej odporne niż inne rasy na H. contortus (tolerancję hemonchotus).

Morfologia

Komórka jajowa ma żółtawy kolor. Jajo ma około 70–85 μm długości i 44 μm szerokości, a wczesne stadia rozszczepienia zawierają od 16 do 32 komórek. Dorosła samica ma 18–30 milimetrów ( 3 / 4 - 1 + 1 / 8 cala) długości i jest łatwo rozpoznawalna po charakterystycznym ubarwieniu „słupka fryzjerskiego”. Czerwono-biały wygląd wynika z tego, że H. contortus jest krwiopijcą, a białe jajniki można zobaczyć zwinięte wokół wypełnionego krwią jelita. Samiec dorosłego robaka jest znacznie mniejszy i ma 10–20 milimetrów ( 3 ⁄ 8 - 13 / 16 cali) długości i wykazuje wyraźną cechę dobrze rozwiniętej kaletki kopulacyjnej, zawierającej asymetryczny płat grzbietowy i promień grzbietowy w kształcie litery Y.

Koło życia

Dorosła samica robaka może uwolnić od 5 000 do 10 000 jaj, które są wydalane z kałem. Następnie jaja rozwijają się w wilgotnych warunkach w kale i dalej rozwijają się w stadium młodociane L1 (rhabditiform) i L2, żywiąc się bakteriami w odchodach. Etap L1 występuje zwykle w ciągu czterech do sześciu dni w optymalnych warunkach 24–29 ° C (75–84 ° F). Rhabditform L2 zrzuca swój naskórek, a następnie rozwija się w zakaźne larwy nitkowate L3. Forma L3 ma ochronny naskórek, ale w suchych, gorących warunkach przeżywalność jest zmniejszona. Owce, kozy i inne przeżuwacze zarażają się, gdy pasą się i połykają zakaźne larwy L3. Zakaźne larwy przechodzą przez pierwsze trzy komory żołądka, aby dotrzeć do trawieńca. Tam L3 zrzucają łuski i zakopują się w wewnętrznej warstwie trawieńca, gdzie rozwijają się w L4, zwykle w ciągu 48 godzin, lub w larwy przed dojrzałością. Następnie larwy L4 linieją i rozwijają się w postać dorosłą L5. Dorosłe samce i samice łączą się w pary i żyją w trawieńcu, gdzie żywią się krwią.

Genetyka

H. contortus został opublikowany w 2013 r. W Wellcome Trust Sanger Institute we współpracy z University of Calgary, University of Glasgow i Moredun Research Institute trwają dalsze prace nad uzupełnieniem genomu referencyjnego . Opracowanie zasobów genetycznych i genomicznych tego pasożyta ułatwi identyfikację zmian genetycznych powodujących oporność na środki przeciwrobacze i może pomóc w opracowaniu nowych leków lub szczepionek do zwalczania chorób i poprawy zdrowia zwierząt.

Patogeniczność

Objawy kliniczne są w dużej mierze spowodowane utratą krwi. Nagła śmierć może być jedyną obserwacją w ostrym zakażeniu, podczas gdy inne typowe objawy kliniczne obejmują bladość, anemię, obrzęk, słabą oszczędność, letarg i depresję. Można zaobserwować gromadzenie się płynu w tkance podżuchwowej, zjawisko powszechnie nazywane „szczęką butelkową”. Wzrost i produkcja są znacznie ograniczone.

Zapobieganie i leczenie

Profilaktyczne leczenie przeciw robakom jest konieczne, aby zapobiec zakażeniu w regionach endemicznych, ale tam, gdzie to możliwe, uzasadnione jest ograniczenie polegania na leczeniu chemicznym, biorąc pod uwagę szybki wzrost oporności na środki przeciw robakom. Komercyjna szczepionka znana jako Barbervax w Australii lub Wirevax w Afryce Południowej stała się dostępna w ostatnich latach. Działa to głównie poprzez zmniejszenie produkcji jaj, a tym samym zanieczyszczenia pastwisk. Szczepionka zawiera białka błony śluzowej jelit robaka Barber's Pole. Zwierzę wytwarza przeciwciała przeciwko białku, które krąży we krwi. Kiedy robak Barbera pije krew, przeciwciała przyczepiają się do wyściółki jego żołądka, zapobiegając trawieniu i głodzeniu zwierzęcia. Następnie robak produkuje mniej jaj i ostatecznie umiera.

Ukierunkowane selektywne metody leczenia, takie jak metoda FAMACHA , mogą być cenne w zmniejszaniu liczby przerw między dawkami, a tym samym zmniejszaniu odsetka przeżywających pasożytów, które są oporne na środki przeciwrobacze. Liczba jaj w kale służy do śledzenia poziomów inwazji pasożytów, podatności poszczególnych zwierząt i skuteczności przeciwrobaczej.

Inne strategie zarządzania obejmują selektywną hodowlę owiec lub kóz bardziej odpornych na pasożyty (np. poprzez ubój najbardziej podatnych zwierząt lub wprowadzanie ras odpornych na pasożyty, takich jak owce tubylcze z wybrzeża Zatoki Perskiej ); ostrożne zarządzanie pastwiskami, takie jak kontrolowany intensywny wypas rotacyjny , zwłaszcza w szczycie sezonu pasożytniczego; oraz „oczyszczanie” zaatakowanych pastwisk poprzez sianokosy, uprawę lub wypasanie niewrażliwych gatunków (np. trzody chlewnej lub drobiu).

Niedawne badania wykazały również, że wykorzystanie ras owiec sierści, takich jak Katahdins, Dorpers i St. Croix, można wybrać ze względu na odporność na pasożyty wewnętrzne ze względów ekonomicznych; dodatkowo rasy włosowe zapewniają odporność, nie wykazując przy tym istotnego wpływu na wzrost ich potomstwa.

Jedną z najbardziej ryzykownych metod, które można zastosować w leczeniu, jest użycie cząstek drutu tlenku miedzi (COWP), aby pomóc w zniszczeniu pasożytów w jelitach bez użycia chemikaliów. Jednak w przypadku owiec dawkowanie musiałoby być bardzo dokładnie monitorowane, ponieważ jeśli podano im zbyt dużą dawkę, wpadną w toksyczność miedzi. W przypadku COWP należy podać najniższą zalecaną dawkę, aby pozostała bezpieczna dla owiec. Przeprowadzone badanie wykazało, że leczenie COWP zmniejszyło liczbę jaj w kale o > 85%. Leczenie cząsteczkami drutu tlenku miedzi może prowadzić do mniejszego polegania na środkach przeciwrobaczych, ponieważ COWP pozwala na ograniczenie rozprzestrzeniania się infekcji pasożytniczych, zwłaszcza jeśli producent próbuje zmniejszyć populację larw na swoich pastwiskach.

Ostatnie badania pokazują, że lektyny fugalne są w stanie hamować rozwój larw. Te lektyny grzybowe to lektyny Corprinopsis cinerea - CCL2, CGL2; Lektyna Aleuria aurantia - AAL; i Marasmius orreades aglutynina – MOA. Te cztery toksyczne lektyny wiążą się ze specyficznymi strukturami glikanów występującymi w H. controtus . Niektóre z tych struktur glikanów mogą reprezentować antygeny, które nie są narażone na działanie układu odpornościowego gospodarza, a zatem mają potencjał do opracowania szczepionki lub leku.

Dalsza lektura

•   Newton, S (1995). „Postęp w szczepieniu Haemonchus contortus ”. Międzynarodowy Dziennik Parazytologii . 25 (11): 1281–1289. doi : 10.1016/0020-7519(95)00065-a . PMID 8635880 .
• Roberts, L., J. Janovy. 2000. Podstawy parazytologii. USA: The McGraw Hill Companies, Inc.
•   Fetterer, R.; Rhoads, M. (1996). „Rola otoczki w odporności larw w stadium zakaźnym Haemonchus contortus na trawienie proteolityczne” . Parazytologia Weterynaryjna . 64 (4): 267–276. doi : 10.1016/0304-4017(95)00926-4 . PMID 8893481 .
•   Dorny, P.; Batubara, A.; Iskander, M.; Pandey, V. (1996). „Zakażenia robakami pasożytniczymi owiec na Sumatrze Północnej w Indonezji”. Parazytologia Weterynaryjna . 61 (3–4): 353–358. doi : 10.1016/0304-4017(95)00826-8 . PMID 8720574 .