Pająk tkacz kul

Pająki-tkacze kul
Zakres czasowy:Kreda – obecna
Argiope catenulata at Kadavoor.jpg
Argiope catenulata
Klasyfikacja naukowa
Królestwo: Animalia
Gromada: stawonogi
podtyp: Chelicerata
Klasa: pajęczaki
Zamówienie: Araneae
Infraorder: Araneomorphae
Nadrodzina: Araneoidea
Rodzina:
Araneidae Clerck , 1757
Różnorodność
186 rodzajów , 3108 gatunków
Distribution.araneidae.1.png

Pająki tkaczy kul są członkami rodziny pająków Araneidae . Są najczęstszą grupą budowniczych spiralnych sieci w kształcie koła , często spotykanych w ogrodach, na polach i w lasach. Angielskie słowo „orb” może oznaczać „okrągły”, stąd angielska nazwa grupy. Araneidy mają osiem podobnych oczu, owłosione lub kolczaste nogi i nie mają narządów stridulacyjnych .

Rodzina ma kosmopolityczną dystrybucję , w tym wiele znanych dużych lub kolorowych pająków ogrodowych. Z 3108 gatunkami w 186 rodzajach na całym świecie Araneidae stanowią jedną z największych rodzin pająków (obok Salticidae i Linyphiidae ) . Sieci araneidów są zbudowane w stereotypowy sposób, w którym szkielet z nieklejącego się jedwabiu jest budowany, zanim pająk doda ostatnią spiralę jedwabiu pokrytą lepkimi kropelkami.

Sieci kul są również wytwarzane przez członków innych rodzin pająków. Tkacze kul o długich szczękach ( Tetragnathidae ) były wcześniej zaliczane do Araneidae; są blisko spokrewnieni, będąc częścią nadrodziny Araneoidea . Rodzina Arkyidae została oddzielona od Araneidae. Tkacze cribellate lub jeżykowate ( Uloboridae ) należą do innej grupy pająków. Ich sieci są uderzająco podobne, ale używają innego rodzaju jedwabiu.

Opis

Argiope sp. siedząc na stabilimentum w środku sieci
Pająki w sieci w pobliżu miejsca, w którym się wykluły
Zbliżenie na głowotułów Eriophora sp . (prawdopodobnie E. bohaterka lub E. pustuosa )
Gasteracantha cancriformis
Sieć Araneidae
Araneidae czekają w swojej sieci na zdobycz

Ogólnie rzecz biorąc, pająki tkające kule są trójpazurowymi budowniczymi płaskich sieci z lepkim spiralnym jedwabiem chwytającym . Tworzenie sieci to wyczyn inżynieryjny, który rozpoczyna się, gdy pająk puszcza linkę na wietrze na inną powierzchnię. Pająk zabezpiecza linkę, a następnie upuszcza kolejną linkę ze środka, tworząc literę „Y”. Reszta rusztowania podąża za wieloma promieniami nieklejącego się jedwabiu przed ostatnią spiralą lepkiego chwytającego jedwabiu.

Trzeci pazur służy do chodzenia po nieklejącej się części sieci. Charakterystyczne jest, że ofiara owada , która wpada w lepkie linie, jest ogłuszana szybkim ukąszeniem, a następnie owinięta jedwabiem. Jeśli ofiarą jest jadowity owad, taki jak osa, owinięcie może poprzedzać ugryzienie i/lub użądlenie. Wiele sukcesów pająków obracających kule w chwytaniu owadów zależy od tego, czy sieć nie jest widoczna dla ofiary, przy czym lepkość sieci zwiększa widoczność, zmniejszając w ten sposób szanse na złapanie ofiary. Prowadzi to do kompromisu między widocznością sieci a zdolnością sieci do zatrzymywania zdobyczy.

Wielu tkaczy kul buduje każdego dnia nową sieć. Większość tkaczy kul jest aktywna w godzinach wieczornych; ukrywają się przez większość dnia. Zwykle pod wieczór pająk zjada starą sieć, odpoczywa przez około godzinę, a następnie snuje nową sieć w tym samym miejscu. Tak więc sieci tkaczy kul są generalnie wolne od nagromadzenia szczątków typowych dla innych gatunków, takich jak pająki czarnej wdowy .

Niektórzy tkacze kul w ogóle nie budują sieci. Członkowie rodzajów Mastophora w obu Amerykach, Cladomelea w Afryce i Ordgarius w Australii wytwarzają lepkie kuleczki, które zawierają analog feromonu . Kula jest zawieszona na jedwabnej nici zwisającej z przednich nóg pająka. Analog feromonu wabi samce motyli tylko kilku gatunków. Te utkną na kuli i są zwijane w celu zjedzenia. Oba rodzaje pająków bolas są silnie zakamuflowane i trudne do zlokalizowania.

U Araneus diadematus zmienne, takie jak wiatr, wsparcie sieci, temperatura, wilgotność i podaż jedwabiu, okazały się zmiennymi w budowie sieci. Podczas badania w porównaniu z testami natury pająki były w stanie zdecydować, jaki kształt utworzy ich sieć, ile spiral chwytających lub szerokość swojej sieci. Chociaż można by się spodziewać, że te pająki po prostu wiedzą te rzeczy, nie jest jeszcze dobrze zbadane, w jaki sposób pajęczak wie, jak zmienić swój projekt sieci w oparciu o otoczenie. Niektórzy naukowcy sugerują, że może to wynikać z przestrzennego uczenia się pająka w jego otoczeniu środowiskowym i wiedzy o tym, co zadziała, a co nie, w porównaniu z naturalnymi regułami behawiorystycznymi.

Kolczaste pająki tkające kule z rodzajów Gasteracantha i Micrathena wyglądają jak nasiona roślin lub ciernie wiszące w ich pajęczynach. Niektóre gatunki Gasteracantha mają bardzo długie, przypominające rogi kolce wystające z ich odwłoków.

Jedną z cech sieci niektórych tkaczy kul jest stabilimentum , przecinające się pasmo jedwabiu przez środek sieci. Występuje w kilku rodzajach, ale Argiope – żółte i pręgowane pająki ogrodowe z Ameryki Północnej – jest najlepszym przykładem. Wraz z wiekiem tkacze kul mają tendencję do zmniejszania produkcji jedwabiu; wielu dorosłych tkaczy kul może wtedy polegać na swoim ubarwieniu, aby przyciągnąć więcej zdobyczy. Opaska może być przynętą na zdobycz, znacznikiem ostrzegającym ptaki przed siecią i kamuflażem dla pająka, gdy ten siedzi w sieci. Stabilimentum może zmniejszać widoczność jedwabiu dla owadów, utrudniając ofierze unikanie sieci. Sieć kul składa się z ramy i promieni podtrzymujących pokrytych lepką spiralą przechwytującą, a jedwab używany przez pająki tkaczy kul ma wyjątkowe właściwości mechaniczne, aby wytrzymać uderzenie latającej ofiary. Pająk tkający kule Zygiella x-notata tworzy unikalną sieć kul z charakterystycznym brakującym sektorem, podobną do innych gatunków z rodzaju Zygiella z rodziny Araneidae.

W okresie kredowym promieniowanie kwitnących roślin i pojawiły się ich owady zapylające. Dowody kopalne wskazują, że w tym czasie istniała sieć kul, co pozwalało na jednoczesne promieniowanie drapieżników pająków wraz z ich ofiarą owadów. Zdolność sieci kul do pochłaniania uderzenia latającej ofiary doprowadziła pająki orbicularian do tego, by stały się dominującymi drapieżnikami owadów powietrznych w wielu ekosystemach. Owady i pająki mają porównywalne wskaźniki zróżnicowania, co sugeruje, że współpromieniowały, a szczyt tego promieniowania wystąpił 100 milionów lat temu, przed powstaniem roślin okrytonasiennych. Vollrath i Selden (2007) wysuwają odważną tezę, że ewolucja owadów była napędzana nie tyle przez rośliny kwitnące, ile przez drapieżnictwo pająków – szczególnie przez sieci kuliste – jako główną siłę selekcyjną. Z drugiej strony niektóre analizy dały szacunki sięgające 265 milionów lat temu, z dużą liczbą (w tym Dimitrov i in. 2016) pośrednią między tymi dwoma.

Większość sieci pajęczaków jest ułożona pionowo, a pająki zwykle zwisają głowami skierowanymi w dół. Kilka sieci, takich jak tkacze kul z rodzaju Metepeira , ma kulę ukrytą w splątanej przestrzeni sieci. Niektóre Metepiera są półspołeczne i żyją w sieciach komunalnych. W Meksyku takie wspólne pajęczyny wycinano z drzew lub krzewów i używano do żywego papieru na muchy . [ potrzebne źródło ] W 2009 r. pracownicy w Baltimore oczyszczalnia ścieków wezwała pomoc w uporaniu się z ponad 100 milionami pająków tkaczy kul, żyjących w społeczności, której udało się utkać fenomenalną sieć pokrywającą około 4 akry budynku, z zagęszczeniem pająków w niektórych obszarach sięgającym 35 176 pająków na metr sześcienny.

Taksonomia

Argiope lobata w południowej Hiszpanii

Najstarszym znanym prawdziwym tkaczem kul jest Mesozygiella dunlopi z dolnej kredy . Kilka skamielin dostarcza bezpośrednich dowodów na to, że trzy główne rodziny tkaczy kulistych, a mianowicie Araneidae, Tetragnathidae i Uloboridae, wyewoluowały do ​​tego czasu, około 140 milionów lat temu. Prawdopodobnie powstały w okresie jurajskim (). Opierając się na nowych dowodach molekularnych w genach jedwabiu, wszystkie trzy rodziny prawdopodobnie mają wspólne pochodzenie.

Dwie nadrodziny, Deinopoidea i Araneoidea, mają podobne sekwencje behawioralne i aparaty przędzalnicze do wytwarzania podobnych architektonicznie sieci. Te ostatnie splatają prawdziwy lepki jedwab z właściwościami wodnego kleju, a te pierwsze używają suchych włókien i lepkiego jedwabiu. Deinopoidea (w tym Uloboridae) mają cribellum - płaską, złożoną wirującą płytkę, z której uwalnia się jedwab cribellate.

Mają też calamistrum – przyrząd z włosia służący do wyczesywania jedwabiu cribellate ze szopki. Araneoidea lub pająki „ecribellate” nie mają tych dwóch struktur. Te dwie grupy pająków tkających kule są bardzo różne morfologicznie, ale istnieje wiele podobieństw między ich formami sieciowymi a zachowaniami związanymi z budową sieci. Cribellates zachowały charakter rodowy, jednak cribellum zaginęło w escribellates. Brak funkcjonalnej szopki u araneoidów jest najprawdopodobniej synapomorficzny .

Jeśli pająki tkaczy kul są grupą monofiletyczną , fakt, że tylko niektóre gatunki w grupie utraciły cechę, zwiększa kontrowersje. Cribellates są wyodrębnione jako odrębny takson, który zachował prymitywną cechę, co czyni linię parafiletyczną i nie jest synonimem żadnej prawdziwej linii ewolucyjnej. Dowody morfologiczne i behawioralne otaczające sieci kul doprowadziły do ​​sporu co do jednego lub podwójnego pochodzenia. Podczas gdy wczesna analiza molekularna dostarczyła więcej wsparcia dla monofiletyki pochodzenia, inne dowody wskazują, że tkacze kul wyewoluowały filogenetycznie wcześniej niż wcześniej sądzono i wymarły co najmniej trzy razy w okresie kredowym .

Reprodukcja

Gatunki Araneid albo łączą się w pary w centralnej części sieci, gdzie samiec powoli przemierza sieć, starając się nie zostać zjedzonym, a po dotarciu do piasty dosiada samicy; lub samiec konstruuje nić godową wewnątrz lub na zewnątrz sieci, aby przyciągnąć samicę poprzez wibracyjne zaloty, a jeśli się powiedzie, krycie następuje na nici.

U kanibalistycznego i polandrowego pająka Argiope bruennichi znacznie mniejsze samce są atakowane podczas pierwszej kopulacji i są kanibalizowane w nawet 80% przypadków. Wszystkie samce, które przeżyły, umierają po drugiej kopulacji, co jest wzorem obserwowanym u innych gatunków Argiope . To, czy samiec przeżyje swoją pierwszą kopulację, zależy od czasu trwania kontaktu genitalnego; samce, które wyskakują wcześnie (przed 5 sekundami), mają szansę na przeżycie, podczas gdy samce, które kopulują dłużej (dłużej niż 10 sekund), niezmiennie umierają. Przedłużająca się kopulacja, chociaż wiąże się z kanibalizmem, poprawia transfer plemników i względne ojcostwo.

Kiedy samce kojarzyły się z samicą niebędącą rodzeństwem, czas ich kopulacji wydłużał się, w związku z czym samce były częściej kanibalizowane. Kiedy samce łączyły się w pary z samicą z rodzeństwa, kopulowały krótko, dzięki czemu miały większe szanse na uniknięcie kanibalizmu. Ucieczka prawdopodobnie zwiększyłaby ich szansę na ponowne skojarzenie z niespokrewnioną samicą. Obserwacje te sugerują, że samce mogą adaptacyjnie dostosowywać swoje inwestycje w oparciu o stopień pokrewieństwa genetycznego samicy, aby uniknąć depresji wsobnej .

Dymorfizm płciowy wielkości

Dymorfizm płciowy odnosi się do fizycznych różnic między samcami i samicami tego samego gatunku. Jedną z takich różnic może być rozmiar.

Araneidy często wykazują dymorfizm wielkości, zwykle znany jako skrajny dymorfizm płciowy, ze względu na zakres różnic w wielkości. Różnica wielkości między gatunkami Araneidae jest bardzo duża. Niektóre samice, takie jak Nephila pilipes , mogą być co najmniej 9 razy większe od samca, podczas gdy inne są tylko nieznacznie większe od samca. Zwykle uważa się, że samica o większym rozmiarze jest wybierana poprzez selekcję płodności , pomysł, że większe samice mogą produkować więcej jaj, a tym samym więcej potomstwa. Chociaż wiele dowodów wskazuje na największą presję selekcyjną na większe samice, niektóre dowody wskazują, że selekcja może również sprzyjać małym samcom.

Araneidy wykazują również zjawisko zwane kanibalizmem seksualnym , które jest powszechnie spotykane w Araneidae. Dowody wskazują na negatywną korelację między dymorfizmem płciowym a przypadkami kanibalizmu seksualnego. Inne dowody wykazały jednak, że różnice w zdarzeniach kanibalistycznych wśród araneidów, gdy mają mniejsze lub nieco większe samce, są korzystne.

Niektóre dowody wskazują, że skrajny dymorfizm może być wynikiem unikania przez samce wykrycia przez samice. W przypadku samców tych gatunków mniejszy rozmiar może być korzystny w przemieszczaniu się do centralnego węzła sieci, więc samice pająków mogą mieć mniejsze szanse na wykrycie samca, a nawet jeśli zostaną wykryte jako ofiara do zjedzenia, mały rozmiar może wskazywać na niewielką Wartość odżywcza. Większe samce araneidów mogą być korzystne podczas kojarzenia się z nicią godową, ponieważ nić jest zbudowana od krawędzi pajęczyny do nici strukturalnych lub pobliskiej roślinności. Tutaj większe samce mogą być mniej podatne na kanibalizm, ponieważ samce są w stanie kopulować, gdy samica wisi, co może uczynić je bardziej bezpiecznymi przed kanibalizmem. W jednej podrodzinie Araneidów, która wykorzystuje nić godową, Gasteracanthinae, kanibalizm seksualny jest najwyraźniej nieobecny pomimo skrajnego dymorfizmu wielkości.

Rodzaje

Od grudnia 2022 r. World Spider Catalog akceptuje następujące rodzaje:

  • Acacesia Simon, 1895 — Ameryka Południowa, Ameryka Północna
  • Acantharachne Tullgren, 1910 — Kongo, Madagaskar, Kamerun
  • Acanthepeira Marx, 1883 — Ameryka Północna, Brazylia, Kuba
  • Acroaspis Karsch, 1878 — Nowa Zelandia, Australia
  • Acrosomoides Simon, 1887 — Madagaskar, Kamerun, Kongo
  • Actinacantha Simon, 1864 — Indonezja
  • Actinosoma Holmberg, 1883 — Kolumbia, Argentyna
  • Aculepeira Chamberlin & Ivie, 1942 — Ameryka Północna, Ameryka Środkowa, Ameryka Południowa, Azja, Europa
  • Acusilas Simon, 1895 — Azja
  • Aethriscus Pocock, 1902 — Kongo
  • Aethrodiscus Strand, 1913 - Afryka Środkowa
  • Aetrocantha Karsch, 1879 — Afryka Środkowa
  • Afracantha Dahl, 1914 — Afryka
  • Agalenatea Archer, 1951 — Etiopia, Azja
  • Alenatea Song & Zhu, 1999 — Azja
  • Allocyclosa Levi, 1999 — Stany Zjednoczone, Panama, Kuba
  • Alpaida O. Pickard-Cambridge, 1889 - Ameryka Środkowa, Ameryka Południowa, Meksyk, Karaiby
  • Amazonepeira Levi, 1989 — Ameryka Południowa
  • Anepsion Strand, 1929 — Oceania, Azja
  • Aoaraneus Tanikawa, Yamasaki i Petcharad, 2021 — Chiny, Japonia, Korea, Tajwan
  • Arachnura Clerck, 1863
  • Araneus Clerck, 1757
  • Araniella Chamberlin i Ivie, 1942 — Azja
  • Aranoethra Butler, 1873 — Afryka
  • Argiope Audouin, 1826 — Azja, Oceania, Afryka, Ameryka Północna, Ameryka Południowa, Kostaryka, Kuba, Portugalia
  • Artifex Kallal & Hormiga, 2018 — Australia
  • Artonis Simon, 1895 — Birma, Etiopia
  • Aspidolasius Simon, 1887 — Ameryka Południowa
  • Augusta O. Pickard-Cambridge, 1877 — Madagaskar
  • Austracantha Dahl, 1914 — Australia
  • Backobourkia Framenau, Dupérré, Blackledge & Vink, 2010 — Australia, Nowa Zelandia
  • Bertrana Keyserling, 1884 — Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa
  • Bijoaraneus Tanikawa, Yamasaki i Petcharad, 2021 — Afryka, Azja, Oceania
  • Caerostris Thorell, 1868 — Afryka, Azja
  • Carepalxis L. Koch, 1872 - Oceania, Ameryka Południowa, Meksyk, Jamajka
  • Celaenia Thorell, 1868 — Australia, Nowa Zelandia
  • Cercidia Thorell, 1869 — Rosja, Kazachstan, Indie
  • Chorizopes O. Pickard-Cambridge, 1871 - Azja, Madagaskar
  • Chorizopesoides Mi & Wang, 2018 — Chiny, Wietnam
  • Cladomelea Simon, 1895 — Republika Południowej Afryki, Kongo
  • Clitaetra Simon, 1889 — Afryka, Sri Lanka
  • Cnodalia Thorell, 1890 — Indonezja, Japonia
  • Coelossia Simon, 1895 — Sierra Leone, Mauritius, Madagaskar
  • Colaranea Court & Forster, 1988 — Nowa Zelandia
  • Collina Urquhart, 1891 — Australia
  • Colphepeira Archer, 1941 — Stany Zjednoczone, Meksyk
  • Courtaraneus Framenau, Vink, McQuillan i Simpson, 2022 — Nowa Zelandia
  • Cryptaranea Court & Forster, 1988 — Nowa Zelandia
  • Cyclosa Menge, 1866 - Karaiby, Azja, Oceania, Ameryka Południowa, Ameryka Północna, Ameryka Środkowa, Afryka, Europa
  • Cyphalonotus Simon, 1895 — Azja, Afryka
  • Cyrtarachne Thorell, 1868 — Azja, Afryka, Oceania
  • Cyrtobil Framenau & Scharff, 2009 — Australia
  • Cyrtophora Simon, 1864 - Azja, Oceania, Dominikana, Kostaryka, Ameryka Południowa, Afryka
  • Deione Thorell, 1898 — Myanmar
  • Deliochus Simon, 1894 — Australia, Papua-Nowa Gwinea
  • Dolofony Walckenaer, 1837 — Australia, Indonezja
  • Dubiepeira Levi, 1991 — Ameryka Południowa
  • Edricus O. Pickard-Cambridge, 1890 - Meksyk, Panama, Ekwador
  • Enacrosoma Mello-Leitão, 1932 — Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa, Meksyk
  • Encyosaccus Simon, 1895 — Ameryka Południowa
  • Epeiroides Keyserling, 1885 — Kostaryka, Brazylia
  • Eriophora Simon, 1864 — Oceania, Stany Zjednoczone, Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa, Afryka
  • Eriovixia Archer, 1951 — Azja, Papua-Nowa Gwinea, Afryka
  • Eustacesia Caporiacco, 1954 — Gujana Francuska
  • Eustala Simon, 1895 — Ameryka Południowa, Ameryka Północna, Ameryka Środkowa, Karaiby
  • Exechocentrus Simon, 1889 — Madagaskar
  • Faradja Grasshoff, 1970 — Kongo
  • Friula O. Pickard-Cambridge, 1897 — Indonezja
  • Galaporella Levi, 2009 — Ekwador
  • Gasteracantha Sundevall, 1833 — Oceania, Azja, Stany Zjednoczone, Afryka, Chile
  • Gastroxya Benoit, 1962 — Afryka
  • Gea CL Koch, 1843 - Afryka, Oceania, Azja, Stany Zjednoczone, Argentyna
  • Gibbaranea Archer, 1951 — Azja, Europa, Algieria
  • Glyptogona Simon, 1884 — Sri Lanka, Włochy, Izrael
  • Gnolus Simon, 1879 — Chile, Argentyna
  • Guizygiella Zhu, Kim & Song, 1997 — Azja
  • Herennia Thorell, 1877 — Azja, Oceania
  • Heterognatha Nicolet, 1849 — Chile
  • Heurodes Keyserling, 1886 — Azja, Australia
  • Hingstepeira Levi, 1995 — Ameryka Południowa
  • Hortophora Framenau i Castanheira, 2021 — Oceania
  • Hypognatha Guérin, 1839 — Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa, Meksyk, Trynidad
  • Hypsacantha Dahl, 1914 — Afryka
  • Hypsosinga Ausserer, 1871 - Azja, Ameryka Północna, Grenlandia, Afryka
  • Ideocaira Simon, 1903 — Republika Południowej Afryki
  • Indoetra Kuntner, 2006 — Sri Lanka
  • Isoxya Simon, 1885 — Afryka, Jemen
  • Kaira O. Pickard-Cambridge, 1889 - Ameryka Północna, Ameryka Południowa, Kuba, Gwatemala
  • Kapogea Levi, 1997 — Meksyk, Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa
  • Kilima Grasshoff, 1970 — Kongo, Seszele, Jemen
  • Larinia Simon, 1874 - Azja, Afryka, Ameryka Południowa, Europa, Oceania, Ameryka Północna
  • Lariniaria Grasshoff, 1970 — Azja
  • Larinioides Caporiacco, 1934 — Azja
  • Lariniophora Framenau, 2011 — Australia
  • Leviana Framenau & Kuntner, 2022 — Australia
  • Leviellus Wunderlich, 2004 — Azja, Francja
  • Lewisepeira Levi, 1993 — Panama, Meksyk, Jamajka
  • Lipocrea Thorell, 1878 — Azja, Europa
  • Macracantha Simon, 1864 - Indie, Chiny, Indonezja
  • Madacantha Emerit, 1970 — Madagaskar
  • Mahembea Grasshoff, 1970 — Afryka Środkowa i Wschodnia
  • Mangora O. Pickard-Cambridge, 1889 — Azja, Ameryka Północna, Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa, Karaiby
  • Mangrovia Framenau i Castanheira, 2022 — Australia
  • Manogea Levi, 1997 — Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa, Meksyk
  • Mastophora Holmberg, 1876 — Ameryka Południowa, Ameryka Północna, Ameryka Środkowa, Kuba
  • Mecynogea Simon, 1903 - Ameryka Północna, Ameryka Południowa, Kuba
  • Megaraneus Lawrence, 1968 — Afryka
  • Melychiopharis Simon, 1895 — Brazylia
  • Metazygia FO Pickard-Cambridge, 1904 - Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa, Ameryka Północna, Karaiby
  • Metepeira FO Pickard-Cambridge, 1903 - Ameryka Północna, Karaiby, Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa
  • Micrathena Sundevall, 1833 — Ameryka Południowa, Karaiby, Ameryka Środkowa, Ameryka Północna
  • Micrepeira Schenkel, 1953 — Ameryka Południowa, Kostaryka
  • Micropoltys Kulczyński, 1911 — Papua-Nowa Gwinea, Australia
  • Milonia Thorell, 1890 — Singapur, Indonezja, Birma
  • Molinaranea Mello-Leitão, 1940 — Chile, Argentyna
  • Nemoscolus Simon, 1895 — Afryka
  • Nemosinga Caporiacco, 1947 — Tanzania
  • Nemospiza Simon, 1903 — Republika Południowej Afryki
  • Neogea Levi, 1983 — Papua-Nowa Gwinea, Indie, Indonezja
  • Neoscona Simon, 1864 — Azja, Afryka, Europa, Oceania, Ameryka Północna, Kuba, Ameryka Południowa
  • Nephila Leach, 1815 — Azja, Oceania, Stany Zjednoczone, Afryka, Ameryka Południowa
  • Nephilengys L. Koch, 1872 — Azja, Oceania
  • Nephilingis Kuntner, 2013 — Ameryka Południowa, Afryka
  • Nicolepeira Levi, 2001 — Chile
  • Novakiella Court & Forster, 1993 — Australia, Nowa Zelandia
  • Novaranea Court & Forster, 1988 — Australia, Nowa Zelandia
  • Nuctenea Simon, 1864 — Algieria, Azja, Europa
  • Oarces Simon, 1879 - Brazylia, Chile, Argentyna
  • Ocrepeira Marx, 1883 — Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa, Karaiby, Ameryka Północna
  • Ordgarius Keyserling, 1886 — Azja, Oceania
  • Paralarinia Grasshoff, 1970 — Kongo, Republika Południowej Afryki
  • Paraplectana Brito Capello, 1867 — Azja, Afryka
  • Paraplectanoides Keyserling, 1886 — Australia
  • Pararaneus Caporiacco, 1940 — Madagaskar
  • Paraverrucosa Mello-Leitão, 1939 — Ameryka Południowa
  • Parawixia FO Pickard-Cambridge, 1904 - Meksyk, Ameryka Południowa, Azja, Papua-Nowa Gwinea, Ameryka Środkowa, Trynidad
  • Parmatergus Emerit, 1994 — Madagaskar
  • Pasilobus Simon, 1895 — Afryka, Azja
  • Perilla Thorell, 1895 — Myanmar, Wietnam, Malezja
  • Pherenice Thorell, 1899 — Kamerun
  • Phonognatha Simon, 1894 — Australia
  • Pitharatus Simon, 1895 — Malezja, Indonezja
  • Plebs Joseph & Framenau, 2012 — Oceania, Azja
  • Poecilarcys Simon, 1895 — Tunezja
  • Poecilopachys Simon, 1895 — Oceania
  • Poltys CL Koch, 1843 - Azja, Afryka, Oceania
  • Popperaneus Cabra-García & Hormiga, 2020 — Brazylia, Paragwaj
  • Porcataraneus Mi & Peng, 2011 — Indie, Chiny
  • Pozonia Schenkel, 1953 — Karaiby, Paragwaj, Meksyk, Panama
  • Prasonica Simon, 1895 — Afryka, Azja, Oceania
  • Prasonicella Grasshoff, 1971 — Madagaskar, Seszele
  • Pronoides Schenkel, 1936 — Azja
  • Pronous Keyserling, 1881 - Malezja, Meksyk, Ameryka Środkowa, Ameryka Południowa, Madagaskar
  • Pseudartonis Simon, 1903 — Afryka
  • Pseudopsyllo Strand, 1916 — Kamerun
  • Psyllo Thorell, 1899 — Kamerun, Kongo
  • Pycnacantha Blackwall, 1865 — Afryka
  • Rubrepeira Levi, 1992 — Meksyk, Brazylia
  • Salsa Framenau & Castanheira, 2022 — Australia, Nowa Kaledonia, Papua-Nowa Gwinea
  • Scoloderus Simon, 1887 - Belize, Ameryka Północna, Argentyna, Karaiby
  • Sedasta Simon, 1894 — Afryka Zachodnia
  • Singa CL Koch, 1836 - Afryka, Azja, Ameryka Północna, Europa
  • Singafrotypa Benoit, 1962 — Afryka
  • Siwa Grasshoff, 1970 — Azja
  • Socca Framenau, Castanheira i Vink, 2022 — Australia
  • Spilasma Simon, 1897 — Ameryka Południowa, Honduras
  • Spinepeira Levi, 1995 — Peru
  • Spintharidius Simon, 1893 — Ameryka Południowa, Kuba
  • Taczanowskia Keyserling, 1879 — Meksyk, Ameryka Południowa
  • Talthybia Thorell, 1898 — Chiny, Birma
  • Tatepeira Levi, 1995 — Ameryka Południowa, Honduras
  • Telaprocera Harmer & Framenau, 2008 — Australia
  • Testudinaria Taczanowski, 1879 — Ameryka Południowa, Panama
  • Thelacantha Hasselt, 1882 — Madagaskar, Azja, Australia
  • Thorellina Berg, 1899 — Myanmar, Papua-Nowa Gwinea
  • Togacantha Dahl, 1914 — Afryka
  • Trichonephila Dahl, 1911 — Afryka, Azja, Oceania, Ameryka Północna, Ameryka Południowa
  • Umbonata Grasshoff, 1971 — Tanzania
  • Ursa Simon, 1895 — Azja, Ameryka Południowa, Afryka Południowa
  • Verrucosa McCook, 1888 - Ameryka Północna, Panama, Ameryka Południowa, Australia
  • Wagneriana FO Pickard-Cambridge, 1904 - Ameryka Południowa, Ameryka Środkowa, Karaiby, Ameryka Północna
  • Witica O. Pickard-Cambridge, 1895 - Kuba, Meksyk, Peru
  • Wixia O. Pickard-Cambridge, 1882 — Brazylia, Gujana, Boliwia
  • Xylethrus Simon, 1895 - Ameryka Południowa, Meksyk, Jamajka, Panama
  • Yaginumia Archer, 1960 — Azja
  • Zealaranea Court & Forster, 1988 — Nowa Zelandia
  • Zilla CL Koch, 1834 - Azerbejdżan, Indie, Chiny
  • Zygiella FO Pickard-Cambridge, 1902 - Ameryka Północna, Azja, Ukraina, Ameryka Południowa

Zobacz też

Dalsza lektura

Linki zewnętrzne

Pobrano z „ https://en.wikipedia.org/w/index.php?title=Orb-weaver_spider&oldid=1134588367 ”