Obszar Pyxine Subcinerea
Klasyfikacja naukowa | |
---|---|
Pyxine subcinerea | |
Królestwo: | Grzyby |
Dział: | Ascomycota |
Klasa: | Lecanoromycetes |
Zamówienie: | Caliciales |
Rodzina: | Caliciowate |
Rodzaj: | Pyksyna |
Gatunek: |
P. subcinerea
|
Nazwa dwumianowa | |
Obszar Pyxine Subcinerea
Mieszaj. (1898)
|
|
Synonimy | |
Pyxine subcinerea to gatunek porostu liściastego z rodziny Caliciaceae . Ma pantropikalny i zazwyczaj rośnie na korze , ale rzadziej na skałach . Porost charakteryzuje się żółtym rdzeniem , soralią na obrzeżach płatów tworzących plechę oraz obecnością chemicznego licheksantonu w korze mózgowej .
Taksonomia
Porost został po raz pierwszy formalnie opisany przez szkockiego naukowca Jamesa Stirtona na podstawie okazów zebranych w Queensland w Australii . Zauważył, że jego plecha była podobna do plechy Pyxine sorediata , jednak Stirton odróżnił ją od tego gatunku „wewnętrzną organizacją zarówno plechy, jak i apotecji”, a także ujemną reakcją K plechy w porównaniu z reakcją żółtą P. sorediata .
Synonimy Pyxine subcinerea obejmują: Physcia melanenta , opisana przez Charlesa Knighta w 1882; Chrysanthoides Pyxine , opisany przez Edvarda Augusta Vainio w 1915 r. na podstawie materiału zebranego na Antylach ; Pyxine meissneri var. sorediosa , opisana przez Johannesa Müllera Argoviensisa w 1879 r.; i kokosy Pyxine var. caesiopruinosa , opisana przez Edwarda Tuckermana w 1869 r. (a później awansowany do odrębnego statusu gatunku jako Pyxine caesiopruinosa przez Henry'ego Andrew Imshauga w 1957 r.).
Opis
Plecha subcinerea Pyxine ma 3–8 cm (1,2–3,1 cala) szerokości, a górna powierzchnia ma kolor od żółtawo-szarego przez szary do brązowawo-szarego lub oliwkowo-szarego . Płatki tworzące plechę mają szerokość 0,3–1,5 mm (0,01–0,06 cala), są nieco ściśle przylegające do podłoża i są mniej więcej płaskie, ale często nieco wklęsłe w pobliżu końcówek. Powierzchnia płatków jest pruinowana , przy czym pręciny przypominają gęste punkty w pobliżu końcówek płatków. Te pruina zawierają weddellit , mineralną formę szczawianu wapnia . Istnieją różne pseudocyphellae na brzegach płatów. Soralie znajdują się w pobliżu krawędzi płatów. Rdzeń cienki i żółty z wierzchu. Dolna powierzchnia jest czarna w środku, ale staje się jaśniejsza w kierunku krawędzi. Ryzyny są mniej lub bardziej gęste i podzielone na gałęzie. Górna kora jest paraplectenchymatyczna (układ komórek, w którym strzępki są zorientowane we wszystkich kierunkach), podczas gdy dolna kora jest prozoplektenchymatyczna (układ komórek, w którym wszystkie strzępki są zorientowane w jednym kierunku). Apotecja (struktury rozrodcze) są powszechne u okazów tropikalnych i subtropikalnych; mierzą 0,3–1,5 mm (0,01–0,06 cala) szerokości i mają niewyraźny trzon wewnętrzny . Natomiast apotecja nie jest zazwyczaj kojarzona z materiałem europejskim. Askospory mają wymiary 13–22 na 6–9 μm . Konidia są prątkowate i mierzą 3–4 μm na około 1 μm .
Drugorzędną substancją chemiczną występującą w Pyxine subcinerea jest licheksanton . Obecność tego związku powoduje, że po oświetleniu światłem UV uzyskuje się złocisto-żółty kolor . Wszystkie testy na obecność porostów są negatywne.
Siedlisko i dystrybucja
Pyxine subcinerea występuje głównie w pantropiku . Chociaż powszechnie rośnie na korze , stwierdzono również, że rośnie na skale , a w jednym przypadku na zaprawie . W Europie odnotowano go z Azorów i Włoch. Donoszono o nim w Afryce (Etiopia, Uganda, Kenia, Tanzania, Seszele, Rwanda i Angola), w całej Azji (w tym w Chinach), Australii, Nowej Zelandii, we wschodnich Stanach Zjednoczonych jego zasięg geograficzny obejmuje subtropikalny do bardziej umiarkowanego regionach, w tym od stanów Nowy Jork , Illinois i Ohio po Florydę , Luizjanę i Teksas . Stwierdzono, że Pyxine subcinerea rośnie na grabie , orzeszniku , hibiskusie , jałowcu , gumie cukrowej , magnolii , dębie , szarańczy , wiązie i rodzaju Prunus . Preferuje niskie wzniesienia, występuje w lasach liściasto- sosnowych , a także na terenach bardziej otwartych, w tym na farmach, polanach i ogrodach.
Pyxine subcinerea jest stosunkowo odporna na zanieczyszczenie powietrza i badano ją pod kątem zastosowania jako kandydata do biomonitoringu . Bioakumuluje toksyczne metale ciężkie , które pobiera z powietrza i zatrzymuje zanieczyszczenia w plechach, z których można następnie pobrać próbki i zbadać je w celu określenia ich stężenia.