Dryomyza anilis
|
|
| Dryomyza anilis | |
|---|---|
| Dryomyza anilis | |
| Klasyfikacja naukowa | |
| Królestwo: | Animalia |
| Gromada: | stawonogi |
| Klasa: | owady |
| Zamówienie: | muchówki |
| Rodzina: | Dryomyzidae |
| Podrodzina: | Dryomyzinae |
| Rodzaj: | Dryomyza |
| Gatunek: |
D. anilis
|
| Nazwa dwumianowa | |
|
Dryomyza anilis
Fallén , 1820
|
|
| Synonimy | |
|
|
Dryomyza anilis to mucha pospolita z rodziny Dryomyzidae . Mucha występuje w różnych obszarach na półkuli północnej i ma brązowe i pomarańczowe zabarwienie z charakterystycznymi dużymi czerwonymi oczami. Długość życia muchy nie jest znana, ale samce hodowane w laboratorium mogą żyć 28–178 dni. D. anilis została niedawno ponownie umieszczona w rodzaju Dryomyza , którego jest gatunkiem typowym . Dryomyzidae były wcześniej częścią Sciomyzidae , ale obecnie są uważane za oddzielną rodzinę z dwiema podrodzinami.
Samce D. anilis zachowują się terytorialnie, strzegąc zwłok, aby przyciągnąć potencjalnych partnerów. Samce również strzegą samic, a konflikty o samice są częste. Samice zazwyczaj kojarzą się z wieloma samcami. Krycie następuje przez kilka rund kopulacji i składania jaj . Podczas krycia samce wykonują serię rytuałów „stukania”, w których używają klamer do opukiwania genitaliów samicy, zwiększając szansę na zapłodnienie jaj samicy. Samice składają kilka partii jaj na tuszach , grzybach i odchodach oraz innych podłożach.
Opis
.jpg)
D. anilis są średniej wielkości i mają całkowitą długość od 7 do 14 mm, ale zazwyczaj mają 12 mm długości. Ich ubarwienie jest jasnobrązowe i pomarańczowe z dużymi czerwonymi oczami. Ogólnie rzecz biorąc, gatunek ten można odróżnić od innych gatunków Dryomyzidae po ich prawie nagiej arista (włosie wierzchołkowe), pokrytym lunule (znak w kształcie półksiężyca, znajdujący się wokół brzegów skrzydeł) oraz rozwiniętym włosiu prostygmatycznym i przedłopatkowym.
Dryomyzidae charakteryzują się blisko rozmieszczonymi pierwszymi segmentami anten , wystającym brzegiem jamy ustnej, prostyrnum w kształcie paska lub jamy ustnej, które nie jest połączone z propleurą oraz brakiem kolców żebrowych. D. anilis ma krótkie tylne rurki spiralne, nie ma haczyków na tylnych płytkach spiralnych i ma dobrze rozwinięte guzki tylko w segmencie 12.
Żywotność muchy w laboratorium wynosi od 28 do 178 dni.
Taksonomia
Morfologia osobników dorosłych wskazuje, że Dromyzidae, Helcomyzidae i Helosciomyzidae są ze sobą bliżej spokrewnione niż z Sciomyzoidea . Dlatego, chociaż Dryomyzidae były wcześniej częścią Sciomyzidae , rodzina jest obecnie uważana za odrębną i ma dwie podrodziny: Dryomyzinae i Helcomyzidae . Istnieją dwa rodzaje, Droymyza z dziesięcioma gatunkami i Oedoparena z dwoma gatunkami, które są obecnie rozpoznawane. Ponadto, w porównaniu z innymi Dryomyza występującymi we wschodnich Stanach Zjednoczonych ( Dryope decipita i Dryomyza simplex ), D. anilis jest gatunkiem najczęściej występującym i ma najsilniejsze oznaczenia na skrzydłach.
Dystrybucja
D. anilis jest gatunkiem holarktycznym , obecnym w Kanadzie i wielu północnych stanach Stanów Zjednoczonych w królestwie Nearktyki . Mucha jest również szeroko rozpowszechniona w obszarze Palearktyki od Wielkiej Brytanii po Japonię . W Wielkiej Brytanii mucha jest powszechna i szeroko rozpowszechniona w Anglii i Walii , ale jest mniej powszechna w Szkocji . D. anilis są zazwyczaj najbardziej rozpowszechnione na wolności od maja do września.
Dorosłe muchy znajdują się w wilgotnych, zacienionych siedliskach wśród nisko rosnącej roślinności i odchodów. Siedliska dla dorosłych zostały znalezione w ludzkich odchodach, padlinie lisów i bażantów oraz cuchnących śmierdzących grzybach. Jaja znaleziono w ludzkich odchodach, a larwy w padlinie bażanta. D. anilis może rozwijać się od jaja do poczwarki na martwej materii zwierzęcej, ale nie na rozkładającej się materii roślinnej. Eksperymentalnie umieszczone larwy nie były w stanie osiągnąć dojrzałości, gdy wyrosły na gnijącej trawie, rozkładającym się miąższu dyni, rozkładającej się sałacie lub krowim oborniku. Osiągają dojrzałość, gdy rosną na hamburgerze, martwych dżdżownicach, martwych żurawiach, martwych ślimakach poligridowych, martwej gąsienicy trojeści mlecznej, martwym ślimaku i gnijących grzybach agarowych.
Zachowanie
Terytorialność
Jedną z charakterystycznych cech D. anilis jest zachowanie terytorialne samców. Samce bronią samic składających jaja, a także małych tuszek, w których samice karmią się i składają jaja. Inne samce będą rzucać wyzwanie samcom terytorialnym o dostęp do terytorium i / lub samic, co skutkuje albo przejęciem zasobu, albo wydaleniem z zasobu. Większe samce częściej wygrywają konflikty o zasoby, a największe samce mają tendencję do zajmowania terytoriów. Samce będą spędzać więcej czasu na obronie samic niż terytorium, co sugeruje, że samce postrzegają samice jako cenniejszy zasób niż terytoria.
Większe tusze zwykle przyciągają wiele samców, z których niektóre będą bronić odrębnych terytoriów na tuszy. Jednak gdy zagęszczenie samców przekroczy określony etap, mniej samców będzie próbowało przejąć kontrolę nad terytorium; zachowanie terytorialne maleje wraz ze wzrostem intensywności konkurujących ze sobą samców.
Gody
_anilis_-_male_(22900404455).jpg)
D. anilis zazwyczaj łączy się w pary, gdy samica zbliża się do tuszy, aby się pożywić. Samiec wokół tuszy inicjuje krycie, dosiadając samicy w określonej pozycji. Czubek odwłoka samca i jego tylne nogi rozkładają skrzydła samicy, podczas gdy pozostałe nogi chwytają skrzydła samicy, odwłok i podłoże, na którym stoją podczas krycia. Krycie składa się wówczas z kilku cykli kopulacji i składania jaj. Para odchodzi od padliny i kopuluje, po czym samica wraca do tuszy i składa jaja, będąc bronioną przez samca. Powtarza się to przez maksymalnie sześć cykli kopulacji i składania jaj, po których samica zazwyczaj opuszcza tuszę, podczas gdy samiec pozostaje.
Sama kopulacja jest odrębnym rytuałem. Najpierw edeag samca jest wprowadzany do dróg rodnych samicy na około minutę, a następnie usuwany, podczas gdy samiec pozostaje na koniu. Po krótkiej nieruchomej pauzie samiec inicjuje serię stukających ruchów, rytmicznie stukając klamrami zewnętrzne genitalia samicy około 20 razy, po czym następuje pojedyncza, dłuższa chwila kontaktu. Następnie para pozostaje bez ruchu przez około dwie minuty, zanim rozpocznie się kolejny cykl stukania. Ten cykl stukania zostanie powtórzony 8-31 razy podczas krycia, z większością sekwencji pukania podczas pierwszego ataku kopulacji. Stukanie zwiększa powodzenie zapłodnienia, prawdopodobnie poprzez wpływ na rozmieszczenie nasienia samca w układzie rozrodczym samicy; samce, które zostały usunięte, zanim mogły wykonać rytuał stukania, były drastycznie mniej skuteczne w zapłodnieniu jaj niż samce, którym pozwolono na stukanie. Większe samce mają tendencję do angażowania się w więcej sekwencji stukania i odnoszą większy sukces w zapłodnieniu, albo ze względu na swój rozmiar, albo z powodu preferencji samic dla dużych samców.
Podczas kopulacji męskie plemniki osadzają się w narządzie magazynującym zwanym bursa copulatrix. Plemniki z poprzednich krycia są przeważnie przechowywane w probówkach do przechowywania dubletów zwanych spermathecae , podczas gdy plemniki z ostatniego krycia są zwykle przechowywane w oddzielnej pojedynczej spermatece. Podczas opukiwania samca plemniki są przenoszone do spermateki singletowej i zazwyczaj samice używają nasienia z spermateki singletowej podczas składania jaj. Z tego powodu samce maksymalizują sukces reprodukcyjny, upewniając się, że jako ostatnie łączą się w pary z daną samicą; ostatni samiec, który łączy się z samicą przed złożeniem jaj, ma znacznie większe prawdopodobieństwo zapłodnienia jej jaj. Jaja złożone podczas ostatniego ataku składania jaj mają największe szanse na przeżycie.
D. anilis do pewnego stopnia wybierają partnerów na podstawie pewnych cech. Samce wydają więcej zasobów na samice z dojrzałymi jajami, angażując się w więcej sekwencji stukania i napadów kopulacji. Samce mogą ocenić stan jaj samicy, naciskając tylnymi łapami na brzuch samicy. Samce odrzucają samice bez dojrzałych jaj. Podobnie samice wykazują różne zachowania, aby uniknąć kojarzenia się z niechcianymi samcami. Jeśli dosiadł niechcianego samca, samica może obrócić brzuch w dół, a także chodzić, kopać, potrząsać lub toczyć się, aby usunąć samca. Samice D. anilis są poliandryczne i często łączą się w pary z kilkoma samcami podczas wypuszczania jednej partii jaj. Samice mogą przechowywać wystarczającą ilość nasienia na dwie partie jaj, dlatego krycie przed każdym złożeniem jaj jest czasochłonne i niepotrzebne, narażając samice na ryzyko drapieżnictwa , choroby i urazy podczas konfliktów między samcami a samcami. Jednak wielokrotne kojarzenie daje samicy dostęp do zasobów samców posiadających terytorium, takich jak pożywienie i miejsca składania jaj, a krycie z samcami posiadającymi terytorium może pozwolić samicy na obronę podczas składania jaj. Większe samice mają tendencję do kojarzenia się z mniejszą liczbą samców i wykonują mniej cykli kopulacyjnych podczas każdego krycia, co może dawać im przewagę nad mniejszymi samicami.
Historia życia
jajko
D. anilis mają około 1,25 mm długości i 0,45 mm szerokości, są wydłużone i zwężają się na jednym końcu . Są koloru kremowo-białego. Jaja mają zestawy wypukłości zwanych kołnierzami , które pojawiają się parami z tylnej i bocznej powierzchni. Kołnierze te są zaokrąglone z przodu i bardziej spiczaste z tyłu. Oprócz tych kołnierzy powierzchnia jajka pokryta jest wzorem drobnych, sześciokątnych linii. Struktura jaja jest przystosowana do przetrwania na różnych rodzajach podłoży , na których składane są jaja. Kołnierze jaja są przystosowane do unoszenia się na powierzchni płynnego podłoża . Ponadto kosmówka przyjmuje kolor podłoża, na którym jest położona, zapewniając jaju kamuflaż i ochronę przed drapieżnikami. Jaja składane są pojedynczo na wilgotnej powierzchni, czasem obok siebie. Dolna powierzchnia jajka jest błyszcząca i lepka. Okres inkubacji jaj jest stosunkowo krótki, zwykle około 24 godzin. Podczas eklozji kosmówka jaja pęka, rozrywając najbardziej zewnętrzną powłokę i umożliwiając ucieczkę larwie. Młode larwy następnie szukają miękkiego miejsca lub szczeliny, w której mogą się zakopać.
Larwa
W pierwszym stadium larwalnym owad ma długość 1,67–2,96 mm i szerokość 0,41–0,59 mm . Przednie przetchlinki (otwory na zewnętrznej powłoce) nie są jeszcze obecne, natomiast rozwinęły się bladożółte przetchlinki tylne. Obecne są cztery zestawy procesów peryferyjnych. Ważnym elementem anatomii muchy jest szkielet głowowo-gardłowy. Szkielet ma zwykle jeden lub dwa haczyki w pysku, które umożliwiają muchie poruszanie się i karmienie. Gdy mucha dojrzewa, jej szkielet głowowo-gardłowy również zmienia się z czasem, aby zmaksymalizować zdolność muchy do przyjmowania składników odżywczych. Zestaw mięśni zwanych mięśniami rozszerzającymi kość piszczelową łączy się ze szkieletem i działa w celu uniesienia sklepienia gardła , poszerzenia światła i zapewnienia większej przestrzeni. W pierwszym stadium rozwojowym szkielet głowowo-gardłowy ma kolor brązowo-czarny i długość 0,28–0,33 mm. Segmenty różnią się pigmentacją , ale zawierają 3–4 rzędy ciemnej pigmentacji, po których następuje szereg mniejszych, bezbarwnych kolców, które rozciągają się od zewnętrznej krawędzi ciała larw do linii środkowej. Pręty boczne łączą się ze sobą, tworząc strukturę przypominającą haczyk do ust.
Drugie stadium jest podobne do larwy trzeciego stadium. Długość w tym miejscu waha się od 2,74-4,71 mm, przy maksymalnej szerokości około 0,61-0,91 mm. Przednie przetchlinki są teraz obecne i mają bladożółty kolor. Na przedniej powierzchni muchy znajduje się płytka, zakrzywiona do góry na obu końcach. Szkielet głowowo-gardłowy ma długość 0,57–0,61 mm. Skleryty żuchwy (stwardniałe części egzoszkieletów) istnieją jako długie, wąskie haczyki ustne, które z boku wydają się trójkątne. Skleryty zębowe znajdujące się obok żuchwy są skierowane w dół i są lekko pigmentowane w kierunku tylnej części muchy. Pomiędzy żuchwowymi znajdują się małe skleryty, a dodatkowy skleryt znajduje się na tylnym końcu w pobliżu hipostomu (struktura znajdująca się w pobliżu pyska, która pozwala zwierzęciu mocno zakotwiczyć się na innym w celu ssania, jak w hipostomie kleszcza ) .
Trzecie stadium rozwojowe ma 4,10–9,42 mm długości i 0,76–2,13 mm szerokości. Powłoka jest przezroczysta, a ogólny kształt ciała przypomina połączenie stożka i cylindra (z przodu owada staje się bardziej spiczasty) . Guzki nie są już obecne w segmentach 1–11. Szkielet głowowo-gardłowy jest ciemnobrązowo-czarny i ma długość 0,93–1,05 mm. Skleryty żuchwy są dobrze rozwinięte i występują parami na obu końcach ciała. Skleryty zębowe są również sparowane i znajdują się osobno w pobliżu krawędzi sklerytów żuchwy. Skleryt hipostomalny nie jest połączony z żadnym innym i ma przednie gałęzie - poszczególne gałęzie - które są szersze niż po jego tylnej stronie.
Poczwarka
W kolejnym stadium larwa zamienia się w poczwarkę . Puparium (stwardniały egzoszkielet chroniący poczwarkę) jest długi i wąski, mierzy 4,41-6,23 mm długości i 1,75-2,51 mm szerokości. Poczwarka jest jasnożółto-brązowa do czerwonawo-brązowej, z segmentami 2-4 i 12 ciemniejszymi niż reszta. Kolce są ułożone w taki sam sposób, jak u larwy w trzecim stadium rozwoju. Poczwarka ma ciemnożółto-brązowe do czerwonawo-brązowych tylne blaszki spiralne i ciemniejszą spiralną bliznę. Płytka odbytu jest również ciemniejsza, czerwonawo-brązowa i wklęsła, tworząc woreczek. Szkielet głowowo-gardłowy również wydaje się podobny do stadium larwy trzeciego stadium.
Ekologia
D. anilis może przetrwać na różnych źródłach pożywienia, od owadów i kręgowców po gnijące grzyby. Grzbiety gardłowe w szkieletach larw sugerują, że larwy czerpią pożywienie z mikroorganizmów w gnijącym organicznym źródle pożywienia. Te grzbiety selektywnie przesiewają ich zapasy żywności, zapewniając, że dostaje się tylko pożywna żywność. Larwy, które żywią się żywą tkanką, nie mają tych grzbietów gardłowych. Krótki okres inkubacji muchy (około 24 godzin) może zapewnić przewagę konkurencyjną przy wykorzystaniu ograniczonych zasobów. badano jeszcze żadnych drapieżników ani pasożytów D. anilis , ale eksperymentalnie kilka larw Mydaea urbana było w stanie zniszczyć dużą populację D. anilis na ludzkich odchodach.
Ochrona
D. anilis służą jako saprofagi w ekosystemie. D. anilis wraz z Calliphora terraenovae wykryto przy użyciu tusz łososia pacyficznego jako źródła pożywienia i podłoża do składania jaj dla D. anilis na wybrzeżu północnego Pacyfiku . Dlatego istnieje obawa, że dalszy spadek populacji łososia może zagrozić D. anilis i innym społecznościom zależnym od łososia.