Arxula adeninivorans

Arxula adeninivorans
Klasyfikacja naukowa
Królestwo:
Dział:
Klasa:
Zamówienie:
Rodzina:
Rodzaj:
Arxula
Gatunek:
A. adeninivorans
Nazwa dwumianowa
Arxula adeninivorans
(Middelhoven, Hoogk. Niet & Kreger) Van der Walt, MTSm. & Y.Yamada (1990)
Synonimy


Trichosporon adenivorans Middelhoven, Hoogk. Niet & Kreger (1984) Blastobotrys adeninivorans (Middelhoven, Hoogk. Niet & Kreger-van Rij) Kurtzman & Robnett (2007)

Arxula adeninivorans ( Blastobotrys adeninivorans ) to dimorficzne drożdże o niezwykłych właściwościach. Pierwszy opis A. adeninivorans pochodzi z połowy lat osiemdziesiątych. Gatunek został początkowo oznaczony jako Trichosporon adeninovorans . Po pierwszej identyfikacji w Holandii , szczepy tego gatunku znaleziono później także na Syberii iw Afryce Południowej w glebie i hydrolizatach drewna. Ostatnio A. adeninivorans została przemianowana na Blastobotrys adeninivorans po szczegółowym porównaniu filogenetycznym z innymi pokrewnymi gatunkami drożdży. Jednak wielu naukowców pragnie zachować popularną nazwę A. adeninivorans .

Charakterystyka

Wszystkie szczepy A. adeninivorans mają niezwykłą aktywność biochemiczną , ponieważ są w stanie asymilować szereg amin , adeninę (stąd nazwa A. adeninivorans ) i kilka innych związków purynowych jako jedyne źródło energii i węgla. Wszystkie mają wspólne właściwości, takie jak asymilacja azotanów , są termiczne -tolerancyjny (mogą rosnąć w temperaturach do 48 ° C lub 118 ° F). Szczególną cechą oddziaływania biotechnologicznego jest dymorfizm zależny od temperatury. W temperaturach powyżej 42 ° C (108 ° F) odwracalne przejście od pączkowanie komórek do postaci grzybni . Pączkowanie zostaje przywrócone, gdy temperatura uprawy spadnie poniżej 42 ° C (108 ° F).

Potencjał biotechnologiczny

Projekt i funkcjonalność systemu wektorowego CoMed. Podstawowy wektor CoMed zawiera wszystkie E. coli do namnażania w systemie E. coli oraz MCS (Multiple Cloning Ste) do integracji modułów ARS, rDNA, markera selekcyjnego i kasety ekspresyjnej. W tym celu fragmenty ARS są flankowane przez miejsca restrykcyjne Sac II i Bcu I, regiony rDNA przez miejsca restrykcyjne Bcu I i Eco 47III, markery selekcyjne przez miejsca restrykcyjne Eco 47III i Sali oraz elementy romoterowe przez Sal I i Apa Ograniczam witryny.

Niezwykłe cechy opisane powyżej czynią A. adeninivorans bardzo atrakcyjnym do zastosowań biotechnologicznych . Z jednej strony jest źródłem wielu enzymów o ciekawych właściwościach i odpowiednich genów, np. glukoamylazy , tannazy , lipazy , fosfatazy i wielu innych. Z drugiej strony jest to bardzo wytrzymały i bezpieczny organizm, który można zmodyfikować genetycznie w celu produkcji obcych białek. gospodarzy można transformować plazmidami . Podstawowy projekt takich plazmidów jest podobny do opisanego w Hansenula polymorpha i drożdżowych platformach ekspresyjnych .

Oto dwa szczególne przykłady szczepów rekombinowanych i ich zastosowania: w obu przypadkach do drożdży wprowadzono kilka plazmidów z różnymi genami produktu obcego. W pierwszym przypadku ten zrekombinowany szczep drożdży nabył zdolność do wytwarzania naturalnych tworzyw sztucznych, a mianowicie PHA ( polihydroksyalkaniany ). W tym celu trzeba było przenieść do tego organizmu nowy szlak syntezy składający się z trzech enzymów. Odpowiednie geny phbA , phbB i phbC wyizolowano z bakterii Ralstonia eutropha i integrowane do plazmidów. Te plazmidy zostały wprowadzone do organizmu. Powstały zrekombinowany szczep był w stanie wytworzyć tworzywo sztuczne.

W drugim przykładzie opracowano biosensor do wykrywania aktywności estrogenów w ściekach. W tym przypadku naśladowano sposób, w jaki estrogeny działają w naturze. Początkowo wprowadzono gen dla ludzkiego receptora estrogenowego alfa ( hERalpha ) zawarty na pierwszym plazmidzie. Białko kodowane przez ten gen rozpoznaje i wiąże estrogeny. Kompleks jest następnie wiązany z drugim genem zawartym na drugim plazmidzie, który zostaje aktywowany po związaniu. W tym przypadku sekwencja genu reporterowego (produkt genu można łatwo monitorować za pomocą prostych testów) poddano fuzji z sekwencją kontrolną (promotorem ) odpowiadającą na kompleks estrogen/receptor. Takie szczepy można hodować w obecności ścieków, a estrogeny obecne w takich próbkach można łatwo określić ilościowo na podstawie ilości produktu genu reporterowego.

  •   Gellissen G (red.) (2005) Produkcja rekombinowanych białek - nowe mikrobiologiczne i eukariotyczne systemy ekspresyjne. Wiley-VCH, Weinheim. ISBN 3-527-31036-3