Drosophila suzukii
Drosophila suzukii | |
---|---|
Samiec i samica | |
Klasyfikacja naukowa | |
Królestwo: | Animalia |
Gromada: | stawonogi |
Klasa: | owady |
Zamówienie: | muchówki |
Rodzina: | Drosophilidae |
Rodzaj: | Drosophila |
Podrodzaj: | Sofofora |
Grupa gatunków : | melanogaster |
Podgrupa gatunków : | suzuki |
Gatunek: |
D. suzukii
|
Nazwa dwumianowa | |
Drosophila suzukii (Matsumura, 1931)
|
Drosophila suzukii , powszechnie nazywana drozofilą cętkowaną lub SWD , to muszka owocowa. D. suzukii , pochodząca z Azji Południowo-Wschodniej, staje się głównym gatunkiem szkodnika w Ameryce i Europie, ponieważ atakuje owoce na wczesnym etapie dojrzewania, w przeciwieństwie do innych gatunków Drosophila , które atakują tylko gnijące owoce.
Pochodząca z Azji Wschodniej D. suzukii została po raz pierwszy opisana w 1931 roku przez Matsumurę, została zaobserwowana w Japonii już w 1916 roku przez T. Kanzawę.
D. suzukii jest szkodnikiem upraw sadowniczych i stanowi poważne zagrożenie ekonomiczne dla miękkich owoców letnich; tj. wiśnie, jagody, maliny, jeżyny, brzoskwinie, nektarynki, morele, winogrona i inne. badania nad szczególnym zagrożeniem, jakie D. suzukii stwarza dla tych owoców.
Opis
Podobnie jak inni przedstawiciele Drosophilidae, D. suzukii jest mały, ma około 2 do 3,5 milimetra ( 5 / 64 do 9 / 64 cala) długości i 5 do 6,5 milimetra ( 13 / 64 do 1 / 4 cala) rozpiętości skrzydeł i wygląda jak krewni muszki owocowej i octowej. Jego ciało jest od żółtego do brązowego z ciemniejszymi paskami na brzuchu i ma czerwone oczy. Samiec ma wyraźną ciemną plamę w pobliżu czubka każdego skrzydła; samice nie mają cętkowanego skrzydła. Przednia łapa samców ma ciemne pasy na pierwszym i drugim stępie. Samica ma długi, ostry, ząbkowany pokładełko . Larwy są małe, białe i cylindryczne, osiągając 3,5 milimetra ( 9 / 64 cala) długości.
Kiedy po raz pierwszy zaobserwowano go w nowym regionie, często mylono D. suzukii z muszką owocową ( Rhagoletis indifferens ) i nadano jej krótkotrwałą nazwę muszka wiśniowa. Muszka wiśniowa jest znacznie większa niż D. suzukii (do 5 milimetrów ( 13 / 64 cala)) i ma wzór ciemnych pasów na skrzydłach zamiast charakterystycznej plamki D. suzukii . Charakterystyczne plamki na skrzydłach samca D. suzukii sprawiły, że zyskał on potoczną nazwę „plamisty drosophila” (SWD).
W przeciwieństwie do krewnych muszki octowej, których pociągają przede wszystkim gnijące lub sfermentowane owoce, samice D. suzukii atakują świeże, dojrzałe owoce, używając swojego przypominającego piłę pokładełka do składania jaj pod miękką skórką owocu. Larwy wykluwają się i rosną w owocach, niszcząc ich wartość handlową. Skutki gospodarcze są znaczące; straty spowodowane inwazją na dużą skalę (20% strat) w samych Stanach Zjednoczonych mogą równać się wpływowi bramek na farmy > 500 mln USD.
D. suzukii ma powolne tempo ewolucji ze względu na mniejszą liczbę pokoleń w ciągu roku, ponieważ wchodzi w zimową diapauzę .
Dystrybucja
Pochodząca z południowo-wschodniej Azji D. suzukii została po raz pierwszy opisana w 1931 roku przez Matsumurę . Zaobserwowany w Japonii już w 1916 roku przez T. Kanzawę, był szeroko obserwowany w niektórych częściach Japonii , Korei i Chin na początku lat trzydziestych XX wieku. W latach 80. XX wieku na Hawajach widziano „muszkę owocową” z cętkowanymi skrzydłami . Po raz pierwszy pojawił się w Ameryce Północnej w środkowej Kalifornii w sierpniu 2008 roku, a następnie został znaleziony w Oregonie i stanie Waszyngton przez Lee i in. , 2011 na północno-zachodnim Pacyfiku w 2009 roku, a obecnie jest szeroko rozpowszechniony w hrabstwach przybrzeżnych Kalifornii , zachodnim Oregonie , zachodnim Waszyngtonie oraz części Kolumbii Brytyjskiej i Florydy . Latem 2010 roku muchę odkryto po raz pierwszy w Karolinie Południowej , Karolinie Północnej , Luizjanie i Utah . Jesienią 2010 muchę odkryto także w Michigan i Wisconsin . Mucha została po raz pierwszy odkryta w północno-wschodnich stanach w 2011 r. oraz w Minnesocie i Idaho w 2012 r. Ponieważ D. suzukii nadal się rozprzestrzenia, większość stanów najprawdopodobniej będzie ją obserwować. Szkodnik stwierdzono również w Europie , w tym w Belgii , Włoszech , Francji i Hiszpanii .
Koło życia
Długość życia D. suzukii różni się znacznie między pokoleniami; od kilku tygodni do dziesięciu miesięcy. Pokolenia wyklute na początku roku mają krótszą długość życia niż pokolenia wyklute po wrześniu. Badania pokazują, że wiele samców i większość samic późnych pokoleń zimuje w niewoli — niektóre żyją nawet 300 dni. W dotychczasowych badaniach pomyślnie zimują tylko osobniki dorosłe. W stanie Waszyngton zaobserwowano D. suzukii w połączeniu z dwoma egzotycznymi i dobrze znanymi gatunkami jeżyn, Rubus armeniacus (= Rubus discolor ) i Rubus laciniatus (odpowiednio jeżyny himalajskie i zimozielone). Zaobserwowano, że mucha rozmnaża się na wielu innych gatunkach dzikich owoców o miękkiej skórce, jednak nadal trwają badania mające na celu określenie jakości poszczególnych gatunków jako żywicieli reprodukcyjnych.
Dorosłe osobniki wyłaniają się z zimowania, gdy temperatura osiąga około 10 ° C (50 ° F) (i 268 stopniodni ). Zapłodniona samica szuka dojrzałych owoców, ląduje na owocu, wkłada swój ząbkowany pokładełek, aby przebić skórkę i składa lęg od 1 do 3 jaj na jedno włożenie. Samice składają jaja na wielu owocach, aw regionach o rzadkich owocach wiele samic składa jaja na tym samym owocu. w ciągu sezonu może wykluć się do 13 pokoleń D. suzukii . Samica może w ciągu swojego życia złożyć nawet 300 jaj. Przy aż 13 pokoleniach w sezonie i zdolności samicy do złożenia do 300 jaj każda, potencjalna wielkość populacji D. suzukii jest ogromna. Należy również zauważyć, że samce D. suzukii stają się bezpłodne w temperaturze 30 ° C (86 ° F), a wielkość populacji może być ograniczona w regionach, które osiągają tę temperaturę.
Larwy rozwijają się wewnątrz owocu. Miejsce składania jaj jest widoczne w wielu owocach przez małą bliznę porów w skórce owocu, często nazywaną „użądleniem”. Po 1 lub 2 dniach obszar wokół „użądlenia” mięknie i opada, tworząc coraz bardziej widoczną skazę. Wgłębienia mogą również wydzielać płyn, który może przyciągać infekcje wtórnymi patogenami bakteryjnymi i grzybiczymi. Larwy mogą opuścić owoc lub pozostać w nim, aby się przepoczwarzyć.
Wpływ ekonomiczny
Ekonomiczny wpływ D. suzukii na uprawy owoców jest negatywny i znacząco wpływa na szeroką gamę owoców letnich w Stanach Zjednoczonych, w tym wiśnie, jagody, winogrona, nektarynki, gruszki, śliwki, śliwki, brzoskwinie, maliny i truskawki oraz jeżyny . Uszkodzenia po raz pierwszy zauważono w Ameryce Północnej w zachodnich stanach Kalifornii, Oregonie i Waszyngtonie w 2008 roku; szacunki strat plonów z tego roku są bardzo zróżnicowane, od nieistotnych strat na niektórych obszarach do 80% strat na innych, w zależności od lokalizacji i upraw. Rzeczywiste straty w wysokości 500 milionów dolarów spowodowane szkodami spowodowanymi przez szkodniki w 2008 r. - pierwszym roku D. suzukii w Kalifornii - wskazują na potencjalne szkody, jakie szkodnik może wyrządzić po wprowadzeniu do nowego miejsca. W Ameryce Północnej iw Europie odnotowano straty gospodarcze, ponieważ mucha rozprzestrzeniła się na nowe obszary. Szacuje się, że w 2015 roku narodowe straty ekonomiczne producentów w Stanach Zjednoczonych wyniosły 700 milionów dolarów. Przyszłe straty mogą się zmniejszyć, gdy hodowcy nauczą się, jak lepiej kontrolować szkodniki, lub mogą rosnąć w miarę rozprzestrzeniania się muchy.
Zarządzanie rolnictwem
Ze względu na wpływ D. suzukii na owoce miękkie rolnicy zaczęli go monitorować i kontrolować. Istnieją różne rodzaje pułapek, zarówno komercyjnych, jak i domowych, które są skuteczne w jego monitorowaniu. Pułapki wykorzystujące ocet jabłkowy z przynętą wykonaną z ciasta pełnoziarnistego okazały się skuteczne dla rolników zarówno do chwytania, jak i monitorowania. Rolnikom zaleca się umieszczanie tych pułapek w zacienionym miejscu, gdy tylko zawiążą się pierwsze owoce i nieusuwanie ich do końca zbiorów. Pułapki należy sprawdzać raz w tygodniu, a hodowcy powinni szukać miejsca na skrzydłach samców, aby ustalić, czy występuje tam D. suzukii .
Na obszarach, gdzie D. suzukii już się zadomowiła lub gdzie jej aktywność była monitorowana, istnieją różne sposoby jej zwalczania. Jednym ze sposobów radzenia sobie z D. suzukii jest usunięcie zainfekowanych owoców i umieszczenie ich w plastikowej torbie na śmietniku. Ta metoda jest skuteczna w usuwaniu D. suzukii z ogrodów i małych obszarów, ale jest trudna dla rolników prowadzących większe gospodarstwa. Rolnicy mogą również wcześnie zbierać owoce miękkie, co zmniejsza narażenie owoców na D. suzukii i prawdopodobieństwo uszkodzenia.
Rolnicy mają do wyboru zarówno konwencjonalne, jak i organiczne opryski w celu zwalczania D. suzukii . Czas oprysków jest ważny dla skutecznego kontrolowania go. Ponieważ D. suzukii jest bardziej aktywny rano i wieczorem, jest to najlepszy czas na jego zwalczanie. Opryski należy zastosować przed złożeniem jaj, a pokrycie musi być dokładne, ponieważ dorosłe osobniki często chowają się w gęstej części czaszy. W zależności od różnorodności owoców miękkich i przepisów obowiązujących w różnych stanach i krajach, istnieje wiele rodzajów skutecznych oprysków organicznych i konwencjonalnych. Przy wyborze rodzaju oprysku należy pamiętać o różnych prawach i terminach poprzedzających zbiory. Większość rodzajów oprysków należy stosować co najmniej raz w tygodniu. Aby zapobiec odporności na niektóre opryski, rolnicy muszą naprzemiennie stosować różne środki owadobójcze.
Parazytoidy
- Ganaspis — Służba Inspekcji Zdrowia Zwierząt i Roślin Departamentu Rolnictwa Stanów Zjednoczonych zatwierdziła, a komitet ds. kontroli biologicznej Północnoamerykańskiej Organizacji Ochrony Roślin zalecił stosowanie Ganaspis brasiliensis jako środka do zwalczania biologicznego D. suzukii . G. brasiliensis był szeroko badany przez innych jako potencjalna biokontrola D. suzukii . (Istnieje jednak spór co do tego, czy to G. brasiliensis atakuje D. suzukii , czy też jest to wyspecjalizowana rasa gospodarzy D. suzukii Ganaspis xanthopoda ).
-
Asobara
- A. brevicauda
- A. wydłużona
- A. japonica , najpowszechniejsza w Korei Południowej
- A. leveri
- A. mezocauda
- A. triangulata
- A. jednokolorowy
-
Leptopilina
- L. decemflagella
- Lj. formozana
- L. japonica - po raz pierwszy schwytana w listopadzie 2020 r. jako przyłów z pułapki Vespa mandarinia w stanie Waszyngton - pierwsze znalezisko tego gatunku w Stanach Zjednoczonych. Może to pomóc w zwalczaniu D. suzukii w Ameryce Północnej.
- Lj. japonica
- Nieokreślona Leptopilina prawdopodobnie sp. listopad przez Buffingtona.
- Leptolamina spp.
- Nieokreślony nowy rodzaj Figitidae spokrewniony z Leptolamina
- Pachycrepoideus vindemiae
- Trichopria drosophilae
- Areotetes striatiferus , prowincja Yunnan , Chiny
- Chors Tanycarpa , Japonia , dwie lokalizacje w Chinach
drapieżniki
Skorki , pluskwy dziewczęce , pająki , mrówki i Orius („drobne robale pirackie”), zwłaszcza O. insidiosus . Prawdopodobnie także biegaczowate ( Carabidae ), świerszcze , larwy siatkówki zielonej , wędrowiec ( Staphylinidae ), zwłaszcza Dalotia coriaria , ptaki i ssaki .
Mikrobiom
Drosophila suzukii, podobnie jak wszystkie owady , jest żywicielem wielu mikroorganizmów. Stwierdzono , że zbiorowiska bakterii jelitowych dorosłego i larwalnego D. suzukii zebrane w jego zasięgu inwazyjnym (USA) są proste iw większości zdominowane przez Tatumella spp. ( Enterobacteriaceae ). Ta mucha jest również zarażona różnymi wirusami w środowisku naturalnym. D. suzukii dzieli niektóre naturalne wirusy ze swoim bliskim krewnym D. melanogaster , zawiera również szereg unikalnych wirusów specyficznych tylko dla niego. Drożdże również stanowią ważną część mikrobiomu Drosophila , przy czym u innych gatunków Drosophila opisano wzajemne relacje z drożdżami . Gatunkami drożdży najczęściej związanymi z D. suzukii były Hanseniaspora uvarum , Metschnikowia pulcherrima , Pichia terricola i P. kluyveri . Chociaż wykazano eksperymentalnie, że niektóre patogeny grzybicze infekują D. suzukii , dzikie infekcje grzybicze D. suzukii wymagają kompleksowego zbadania.
Galeria
Obraz z mikroskopu elektronowego pokładnika samicy
Wiśnia z bliznami po złożeniu jaj
Linki zewnętrzne
- Ostrzeżenie przed szkodnikami: Spotted Wing Drosophila , Departament Rolnictwa stanu Oregon
- Witryna ogrodnicza Uniwersytetu Stanowego Oregon
- Uniwersytet Stanu Waszyngton
- Witryna Spotted Wing Drosophila Uniwersytetu Stanowego Michigan
- Spotted Wing Drosophila na stronie internetowej UF / IFAS Featured Creatures
- Profil gatunku — Spotted Wing Drosophila ( Drosophila suzukii ) , Narodowe Centrum Informacji o Gatunkach Inwazyjnych, Narodowa Biblioteka Rolnicza Stanów Zjednoczonych .
- „WSCHODZĄCY SZKODNIK: Drosophila plamisto-skrzydłowa - szkodnik jagodowy i pestkowy” . Podręczniki zarządzania szkodnikami na północno-zachodnim Pacyfiku . 2016-03-28 . Źródło 2020-12-15 .
- „Cętkowane skrzydło Drosophila” . Oregon State University Kolegium Nauk Rolniczych . Źródło 2020-12-15 .
Dalsza lektura
- Bellamy, David E.; Sisterson, Mark S.; Walse, Spencer S. (2013). „Ilościowe określanie potencjału żywiciela: indeksowanie świeżych owoców po zbiorze dla Drosophila plamistego skrzydła, Drosophila suzukii ” . PLOS JEDEN . 8 (4): 1–10. Bibcode : 2013PLoSO...861227B . doi : 10.1371/journal.pone.0061227 . PMC 3625224 . PMID 23593439 .
- Hamby, Kelly A.; Kwok, Rosanna S.; Załom, Frank G.; Chiu, Joanna C. (2013). „Integracja aktywności okołodobowej i profili ekspresji genów w celu przewidywania chronotoksyczności odpowiedzi Drosophila suzukii na środki owadobójcze” . PLOS JEDEN . 8 (7): 1–14. Bibcode : 2013PLoSO...868472H . doi : 10.1371/journal.pone.0068472 . PMC 3702611 . PMID 23861907 .
- Mazzoni, Valerio; Anfora, Gianfranco; Virant-Doberlet, Meta (2013). „Wibracje podłoża podczas zalotów u trzech gatunków Drosophila ” . PLOS JEDEN . 8 (11): 1–8. Bibcode : 2013PLoSO...880708M . doi : 10.1371/journal.pone.0080708 . PMC 3829934 . PMID 24260459 .
- Kacsoh, Balint Z.; Schlenke, Todd A. (2012). „Wysokie obciążenie hemocytów jest związane ze zwiększoną odpornością na parazytoidy u Drosophila suzukii , krewnego D. melanogaster ” . PLOS JEDEN . 7 (4): 1–16. Bibcode : 2012PLoSO...734721K . doi : 10.1371/journal.pone.0034721 . PMC 3328493 . PMID 22529929 .