Deformylująca oksygenaza aldehydowa

Oksygenaza aldehydowa (deformylująca)
4PGI structure.png
Struktura deformylującej oksygenazy aldehydowej cyjanobakteryjnej P. marinus w konformacji aktywnej (​)
Identyfikatory
nr WE 4.1.99.5
Alt. nazwy Dekarbonylaza aldehydowa
Bazy danych
IntEnz Widok IntEnz
BRENDA Wpis BRENDY
ExPASy Widok NiceZyme
KEGG Wpis KEGG
MetaCyc szlak metaboliczny
PRYM profil
Struktury PDB RCSB PDB PDBe PDB suma
Szukaj
PKW artykuły
PubMed artykuły
NCBI białka

Deformylujące oksygenazy aldehydowe ( ADO ) ( EC 4.1.99.5 ) to rodzina enzymów , które katalizują utlenianie średnio - i długołańcuchowych aldehydów do alkanów poprzez usuwanie grupy karbonylowej w postaci mrówczanu .

n -aldehyd + O 2 + 2 NADPH + H + → ( n -1)-alkan + mrówczan + H 2 O + 2 NADP +

Oksygenazy deformylujące aldehydy występują w sinicach jako część szlaku biosyntezy alkanów . Ich substratami są średnio- i długołańcuchowe aldehydy utworzone z acylo- ACP przez reduktazy acylo-ACP ( EC 1.2.1.80 ), zwykle o 16 i 18 atomach węgla, ale potencjalnie tak krótkie jak nonanal i dekanal . W porównaniu CO2 z innymi dekarbonylazami aldehydowymi, takimi jak dekarbonylaza aldehydowa owadzich lub roślinnych , ADO cyjanobakterii jest niezwykłe pod względem ewoluującego mrówczanu, a nie CO lub , i rezydowania w cytozolu . Jest również enzymatycznie niezwykłe w katalizowaniu formalnie hydrolitycznego i neutralnego pod względem redoks natlenienia substratu.

Struktura

Aktywna konformacja P. marinus cADO (​-A) wykazująca aktywną koordynację miejsca.
Konformacja apoenzymu P.marinus cADO (-B) pokazująca rozwinięcie helisy 5 i ekspozycję miejsca aktywnego. Dla ilustracji uwzględniono kofaktory.

Cyjanobakteryjne deformylujące oksygenazy aldehydowe są cytozolowymi niehemowymi oksygenazami di-żelazowymi , ale są znacznie mniejsze (29 kDa) niż inni członkowie rodziny i dzielą homologię sekwencji z reduktazami podobnymi do ferrytyny lub rybonukleotydami . Ogólna struktura to wiązka 8 alfa-helis koordynujących dwa centralne kofaktory żelaza poprzez histydynę , asparaginian i glutaminian . Kanały substratu leżą równolegle do helis i kończą się w środku di-żelaza.

Zaobserwowano zmiany konformacyjne podczas cyklu enzymatycznego Synechococcus elongates ADO (​, ​, ​, ​). Wiązanie substratu aldehydowego powoduje wyparcie dwóch koordynujących reszt na helisie 5 (Glu157 i His160), powodując rozwinięcie części helisy (reszty 144-150). Powstały otwór w powierzchni białka odsłania miejsce aktywne, ułatwiając wejście tlenu kosubstratu.

Podobną zmianę konformacyjną zaobserwowano dla Prochlorococcus marinus ADO (​), w którym reszty 154-165 na helisie 5 są rozwijane w konformacji apoenzymu , aby ułatwić wejście metalu.

Mechanizm

Reakcja katalizowana przez ADO jest niezwykła, ponieważ jest reakcją utleniania, która powoduje formalną hydrolizę , a nie utlenianie substratu. Dokładny mechanizm nie jest w pełni poznany, a obecne zrozumienie opiera się na konsensusie między badaniami mechanistycznymi i porównaniem z podobnymi enzymami. Strukturalnie podobna jednostka R2 reduktazy rybonukleotydowej przebiega poprzez mechanizm rodnika tyrozylowego , ale homologiczna tyrozyna jest zastępowana przez fenyloalaninę w ADO.

Badania mechanistyczne sugerują, że wodór aldehydowy jest zatrzymywany w mrówczanie, wodór alkanowy pochodzi z rozpuszczalnika, a jeden tlen mrówczanowy pochodzi z O2 . Wstępnie przypuszcza się, że mechanizm przebiega w następujących krokach:

  1. Zredukowane di-żelazo koordynuje tlen, który utlenia żelazo i tworzy nadtlenek .
  2. Gatunek nadtlenku atakuje aldehyd.
  3. Przeniesienie elektronu połączone z rozszczepieniem gatunku perokso generuje rodnik hemi-acetalowy .
  4. Końcowe wiązanie CC rozszczepia się homolitycznie, tworząc rodnik alkilowy i uwalnia mrówczan.
  5. Rodnik alkilowy jest wygaszany przez końcowe przeniesienie elektronu.
  6. Dwa transfery elektronów przywracają di-żelazo w stanie zredukowanym i uwalniają cząsteczkę wody.

Zaobserwowano również niespecyficzne tworzenie alkoholi zamiast alkanów, co zamiast tego odpowiadałoby rozszczepieniu heterolitycznemu .

Kinetyka

Km 9 dla O2 wynosi 84 ± µM . Jednak obserwowany obrót katalityczny jest wyjątkowo nieefektywny, rzędu k cat = 1 min −1 , co stwarza możliwość, że obecne rozumienie roli funkcjonalnej, kofaktorów, a nawet substratów ADO jest nieprawidłowe. Wyrażany transgenetycznie ADO wydaje się być zależny od ferredoksyny - reduktazy ferredoksyny w dostarczaniu równoważników redukujących , ale endogenny system redukujący nie jest znany. Ponadto zaobserwowano również niezależną od tlenu deformylację aldehydu.

H 2 O 2 jest inhibitorem cADO, a białko fuzyjne ADO- katalaza wykazuje lepszą przemianę materii. Zaobserwowano również, że krótkołańcuchowe aldehydy są inhibitorami substratów.