paksylina
PXN | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Identyfikatory | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
, entrez:5829, paxillin | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Identyfikatory zewnętrzne | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Wikidane | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Paksylina jest białkiem , które u ludzi jest kodowane przez gen PXN . Paxillin ulega ekspresji w ogniskowych zrostach komórek nieprążkowanych i w costamerach komórek mięśni poprzecznie prążkowanych i działa w celu przylegania komórek do macierzy pozakomórkowej . Mutacje w PXN , jak również nieprawidłowa ekspresja białka paksyliny są zaangażowane w progresję różnych nowotworów.
Struktura
Ludzka paksylina ma masę cząsteczkową 64,5 kDa i długość 591 aminokwasów .
Region C-końcowy paksyliny składa się z czterech tandemowych domen LIM z podwójnym palcem cynkowym , które są bogate w cysteinę / histydynę z konserwatywnymi powtórzeniami; służą one jako miejsca wiązania dla białkowej fosfatazy tyrozynowej-PEST , tubuliny i służą jako motyw kierujący dla zrostów ogniskowych .
N -końcowy region paksyliny ma pięć wysoce konserwatywnych sekwencji bogatych w leucynę , zwanych motywami LD, które pośredniczą w kilku interakcjach, w tym z pp125FAK i winkuliną . Przewiduje się, że motywy LD utworzą amfipatyczne helisy alfa , z każdą resztą leucyny umieszczoną na jednej stronie helisy alfa , tworząc hydrofobowy interfejs wiążący białka. Region N-końcowy ma również domenę bogatą w prolinę , która ma potencjał dla Src- Wiązanie SH3 . Trzy N-końcowe motywy Y XX P mogą służyć jako miejsca wiązania dla talin lub v-Crk SH2 .
Funkcjonować
Paxillin jest białkiem adaptera transdukcji sygnału , odkrytym w 1990 roku w laboratorium Keitha Burridge'a. C-końcowy region paksyliny zawiera cztery domeny LIM , które kierują paksylinę do zrostów ogniskowych . Przypuszcza się, że jest to związane bezpośrednio z cytoplazmatycznym ogonem beta- integryny . N-końcowy region paksyliny jest bogaty w miejsca interakcji białko-białko. Białka wiążące się z paksyliną są różnorodne i obejmują białkowe kinazy tyrozynowe , takie jak Src i kinaza ogniskowej adhezji (FAK) , białka strukturalne, takie jak winkulina i aktopaksyna, oraz regulatory organizacji aktyny, takie jak COOL/PIX i PKL/GIT. Paksylina jest fosforylowana przez tyrozynę przez FAK i Src po zaangażowaniu integryny lub stymulacji czynnikiem wzrostu, tworząc miejsca wiązania dla białka adaptorowego Crk .
W komórkach mięśni poprzecznie prążkowanych paksylina jest ważna w costamerogenezie lub tworzeniu costameres , które są wyspecjalizowanymi strukturami przypominającymi adhezję ogniskową w komórkach mięśniowych, które wiążą struktury dysku Z w sarkolemmie z macierzą pozakomórkową . Obecny roboczy model kostamerogenezy polega na tym, że w hodowanych, niezróżnicowanych mioblastach integryna alfa-5 , winkulina i paksylina są złożone i zlokalizowane głównie w ogniskowych zrostach . Podczas wczesnego różnicowania dochodzi do tworzenia premiofibryli poprzez sarkomerogenezę , a premiofibryle gromadzą się w strukturach typowych dla zrostów ogniskowych w komórkach innych niż mięśnie; podobne zjawisko obserwuje się w hodowanych kardiomiocytach . Premiofibryle stają się powstającymi miofibrylami, które stopniowo wyrównują się, tworząc dojrzałe miofibryle i pojawiają się powstające struktury costamere . Białka Costameric redystrybuują, tworząc dojrzałe costamery . Chociaż dokładne funkcje paksyliny w tym procesie wciąż nie są znane, badania nad partnerami wiążącymi paksyliny dostarczyły mechanistycznego zrozumienia jej funkcji. Bogaty prolinę region paksyliny specyficznie wiąże się z drugą domeną SH3 ponsyny , która pojawia się po rozpoczęciu różnicowania miogennego iz ekspresją ograniczoną do costamerów . Wiemy również, że wiązanie paksyliny z kinazą ogniskowej adhezji (FAK) ma kluczowe znaczenie dla kierowania funkcją paksyliny. Fosforylacja _ _ FAK w serynie -910 reguluje interakcję FAK z paksyliną i kontroluje stabilność paksyliny w costamerach w kardiomiocytach , przy czym fosforylacja zmniejsza okres półtrwania paksyliny. Jest to ważne, aby zrozumieć, ponieważ stabilność FAK -paksylina jest prawdopodobnie odwrotnie proporcjonalna do stabilności interakcji winkulina -paksylina, co prawdopodobnie wskazywałoby na siłę interakcji costamere , jak również reorganizacja sarkomerów ; procesów związanych z kardiomiopatią rozstrzeniową . Dodatkowe badania wykazały, że sama paksylina jest fosforylowana, a to uczestniczy w hipertroficznych szlakach sygnałowych w kardiomiocytach . Traktowanie kardiomiocytów hipertroficznym agonistą, fenylefryną, stymulowało szybki wzrost fosforylacji tyrozyny paksyliny , w której pośredniczyły białkowe kinazy tyrozynowe .
Reorganizację strukturalną paksyliny w kardiomiocytach wykryto również w mysich modelach kardiomiopatii rozstrzeniowej . W mysim modelu tropomoduliny dystrybucja paksyliny została zmieniona wraz ze zwiększoną fosforylacją i rozszczepieniem paksyliny. Podobnie wykazano, że paksylina ma zmienioną lokalizację w kardiomiocytach myszy transgenicznych wyrażających konstytutywnie aktywny rac1 . Dane te pokazują, że zmiany w costameric organizacja, częściowo poprzez redystrybucję paksyliny, może być mechanizmem patogennym w kardiomiopatii rozstrzeniowej . Ponadto u myszy poddanych przerostowi serca wywołanemu przeciążeniem ciśnieniowym , indukującemu kardiomiopatię przerostową , poziomy ekspresji paksyliny wzrosły, co sugeruje rolę paksyliny w obu typach kardiomiopatii .
Znaczenie kliniczne
Wykazano, że paxillin odgrywa istotną klinicznie rolę u pacjentów z kilkoma rodzajami raka. Zwiększoną ekspresję paksyliny wykryto w obszarach przednowotworowych hiperplazji , metaplazji płaskonabłonkowej i metaplazji komórek kubkowych , a także zmian dysplastycznych i raka u pacjentów wysokiego ryzyka z gruczolakorakiem płuc . Mutacje w PXN są związane ze zwiększonym wzrostem guza, proliferacją komórek i inwazją w tkankach raka płuc.
Spójnym odkryciem podczas transformacji guza jest to, że białko paksyliny jest rekrutowane i fosforylowane . Paxillin odgrywa rolę w szlaku sygnałowym kinazy tyrozynowej MET, który jest regulowany w górę w wielu nowotworach.
Interakcje
Wykazano, że Paxillin wchodzi w interakcje z:
Dalsza lektura
- Panetti TS (styczeń 2002). „Fosforylacja tyrozyny paksyliny, FAK i p130CAS: wpływ na rozprzestrzenianie się i migrację komórek” . Granice w Bioscience . 7 (1–3): d143-50. doi : 10.2741/panetti . PMID 11779709 . S2CID 35708933 .
- Rose DM, Han J, Ginsberg MH (sierpień 2002). „Integryny alfa4 i odpowiedź immunologiczna”. Recenzje immunologiczne . 186 : 118–24. doi : 10.1034/j.1600-065X.2002.18611.x . PMID 12234367 . S2CID 37850994 .
- Salgia R, Uemura N, Okuda K, Li JL, Pisick E, Sattler M, de Jong R, Druker B, Heisterkamp N, Chen LB (grudzień 1995). „CRKL łączy p210BCR / ABL z paksyliną w komórkach przewlekłej białaczki szpikowej” . Journal of Biological Chemistry . 270 (49): 29145–50. doi : 10.1074/jbc.270.49.29145 . PMID 7493940 .
- Bergman M, Joukov V, Virtanen I, Alitalo K (luty 1995). „Nadekspresja kinazy tyrozynowej Csk jest zlokalizowana w zrostach ogniskowych, powoduje reorganizację integryny alfa v beta 5 i zakłóca rozprzestrzenianie się komórek HeLa” . Biologia molekularna i komórkowa . 15 (2): 711–22. doi : 10.1128/mcb.15.2.711 . PMC 231937 . PMID 7529872 .
- Schaller MD, Otey CA, Hildebrand JD, Parsons JT (wrzesień 1995). „Kinaza adhezji ogniskowej i paksylina wiążą się z peptydami naśladującymi domeny cytoplazmatyczne integryny beta” . Journal of Cell Biology . 130 (5): 1181-7. doi : 10.1083/jcb.130.5.1181 . PMC 2120552 . PMID 7657702 .
- Yoshida M, Westlin WF, Wang N, Ingber DE, Rosenzweig A, Resnick N, Gimbrone MA (kwiecień 1996). „Adhezja leukocytów do śródbłonka naczyniowego indukuje wiązanie selektyny E z cytoszkieletem aktynowym” . Journal of Cell Biology . 133 (2): 445–55. doi : 10.1083/jcb.133.2.445 . PMC 2120789 . PMID 8609175 .
- Salgia R, Sattler M, Pisick E, Li JL, Griffin JD (luty 1996). „p210BCR / ABL indukuje tworzenie kompleksów zawierających ogniskowe białka adhezyjne i produkt protoonkogenu p120c-Cbl”. Hematologia eksperymentalna . 24 (2): 310–3. PMID 8641358 .
- Salgia R, Pisick E, Sattler M, Li JL, Uemura N, Wong WK, Burky SA, Hirai H, Chen LB, Griffin JD (październik 1996). „p130CAS tworzy kompleks sygnałowy z białkiem adaptera CRKL w komórkach hematopoetycznych transformowanych przez onkogen BCR/ABL” . Journal of Biological Chemistry . 271 (41): 25198–203. doi : 10.1074/jbc.271.41.25198 . PMID 8810278 .
- Retta SF, Barry ST, Critchley DR, Defilippi P, Silengo L, Tarone G (grudzień 1996). „Przyczepność ogniskowa i tworzenie włókien stresowych jest regulowane przez aktywność fosfatazy tyrozynowej”. Eksperymentalne badania komórkowe . 229 (2): 307–17. doi : 10.1006/excr.1996.0376 . hdl : 2318/37568 . PMID 8986614 .
- Mazaki Y, Hashimoto S, Sabe H (marzec 1997). „Komórki monocytów i komórki rakowe wyrażają nowe izoformy paksyliny o różnych właściwościach wiązania ogniskowych białek adhezyjnych” . Journal of Biological Chemistry . 272 (11): 7437–44. doi : 10.1074/jbc.272.11.7437 . PMID 9054445 .
- Hiregowdara D, Abraham H, Fu Y, London R, Abraham S (kwiecień 1997). „Fosforylacja tyrozyny powiązanej adhezyjnej ogniskowej kinazy tyrozynowej w megakariocytach po stymulacji czynnikiem komórek macierzystych i octanem mirystynianu forbolu oraz jej powiązanie z paksyliną” . Journal of Biological Chemistry . 272 (16): 10804-10. doi : 10.1074/jbc.272.16.10804 . PMID 9099734 .
- Ostergaard HL, Lou O, Arendt CW, Berg NN (marzec 1998). „Fosforylacja paksyliny i asocjacja z Lck i Pyk2 w limfocytach T stymulowanych anty-CD3 lub anty-CD45” . Journal of Biological Chemistry . 273 (10): 5692–6. doi : 10.1074/jbc.273.10.5692 . PMID 9488700 .
- Fernandez R, Suchard SJ (maj 1998). „Aktywacja Syk jest wymagana do rozprzestrzeniania się i uwalniania H2O2 w przylegających ludzkich neutrofilach”. Journal of Immunology . 160 (10): 5154–62. doi : 10.4049/jimmunol.160.10.5154 . PMID 9590268 . S2CID 22362259 .
- Lewis JM, Schwartz MA (czerwiec 1998). „Integryny regulują asocjację i fosforylację paksyliny przez c-Abl” . Journal of Biological Chemistry . 273 (23): 14225–30. doi : 10.1074/jbc.273.23.14225 . PMID 9603926 .
- Ganju RK, Munshi N, Nair BC, Liu ZY, Gill P, Groopman JE (lipiec 1998). „Ludzki wirus niedoboru odporności tat moduluje receptor Flk-1 / KDR, kinazy białkowe aktywowane mitogenem i składniki adhezji ogniskowej w komórkach mięsaka Kaposiego” . Dziennik wirusologii . 72 (7): 6131–7. doi : 10.1128/JVI.72.7.6131-6137.1998 . PMC 110419 . PMID 9621077 .
- Deakin NIE, Turner CE (sierpień 2008). „Paxillin dojrzewa” . Journal of Cell Science . 121 (Pt 15): 2435–44. doi : 10.1242/jcs.018044 . PMC 2522309 . PMID 18650496 .
Linki zewnętrzne
- MBInfo: Paxillin
- Paxillin z linkami w Cell Migration Gateway zarchiwizowane 11 grudnia 2014 r. W Wayback Machine
- Paxillin w US National Library of Medicine Medical Subject Headings (MeSH)
- Przegląd wszystkich informacji strukturalnych dostępnych w PDB dla UniProt : P49023 (Human Paxillin) w PDBe-KB .
- Przegląd wszystkich informacji strukturalnych dostępnych w PDB dla UniProt : Q8VI36 (mysz Paxillin) w PDBe-KB .