Phakopsora pachyrhizi
|
|
| Phakopsora pachyrhizi | |
|---|---|
| Klasyfikacja naukowa | |
| Królestwo: | Grzyby |
| Dział: | Basidiomycota |
| Klasa: | Pucciniomycetes |
| Zamówienie: | Pucciniale |
| Rodzina: | Phakopsoraceae |
| Rodzaj: | Fakopsora |
| Gatunek: |
P. pachyrhizi
|
| Nazwa dwumianowa | |
|
Phakopsora pachyrhizi |
|
|
|
| Mapa konturowa przedstawiająca liczbę miejsc NADP z pozytywnym wynikiem testu na obecność P. pachyrhizi w centrum i na wschodzie Stanów Zjednoczonych w 2006 r. | |
| Synonimy | |
|
|
Phakopsora pachyrhizi jest patogenem roślin . Powoduje azjatycką rdzę soi .
Zastępy niebieskie
Phakopsora pachyrhizi jest bezwzględnym biotroficznym patogenem wywołującym rdzę soi azjatyckiej. Phakopsora pachyrhizi może w warunkach naturalnych wpływać na 31 różnych gatunków roślin należących do 17 różnych rodzajów. Eksperymenty w laboratoriach pozwoliły wykorzystać Phakopsora pachyrhizi do zainfekowania 60 innych gatunków roślin. Głównymi żywicielami są Glycine max (soja), Glycine soja (dzika soja) i Pachyrhizus erosus (Jicama).
| Nazwa naukowa | Nazwa zwyczajowa |
| Alysicarpus glumaceus | Koniczyna Alicji |
| Alysicarpus nummularifolius | |
| Alysicarpus rugosus | Koniczyna Alicji |
| Alysicarpus vaginalis | Koniczyna Alicji |
| Cajanus cajan * | Cajan, groszek gołębi |
| Calopogonium mucunoides | |
| Gladiat Canavalia | miecznik |
| Centrosema pubescens | Groszek motylkowy |
| Clitoria termatea | Groszek Kordofan, groszek motylkowy, skrzydełka gołębia azjatyckiego |
| Coronilia varia | Koronowiec |
| Crotalaria anagyroides | Grzechotka |
| Crotalaria saltiana | Grzechotka |
| Crotaria spectabilis | |
| Delonix regia | Poinciana lub królewska Poinciana |
| Desmodium triflorum | Biedronka trójkwiatowa |
| Subumbrany Erythrina | Dadap |
| Erythrina variegate | Indyjskie drzewo koralowe |
| laski glicyny | Pokrewny soi |
| Tajna glicyna | Pokrewny soi |
| Tajna glicyna | Pokrewny soi |
| Falcadata glicyny | Pokrewny soi |
| Glicyna max * | soja |
| Soja glicynowa | |
| tabacina glicyna | Pokrewny soi |
| Kennedia prostata | |
| Kennedia rubicunda | |
| Lablab purpureus | Lablab, hiacyntowa fasola |
| Lespedeza bicolor | Lespedeza |
| Lespedeza striata | Lespedeza |
| Lespedeza stipulaceae | Lespedeza |
| Lotos spp. | Koniczyna |
| Lotos amerykański | |
| Łubin * | Łubin |
| Lupinus albus | Łubin biały |
| Lupinus angustifolius | Łubin wąskolistny |
| Lupinus hirsutus | Łubin niebieski |
| Lupinus luteus | Łubin żółty |
| M. speciosus | |
| Macroptilium atropurpurem | Siratro, siratro z fioletowej fasoli |
| Macrotyloma axilare | |
| Arborea Medicago | Lekarski |
| Medicago lupulina | Czarny medyk |
| Melilotus officinalis | Żółta słodka koniczyna |
| Mucuna | Aksamitna fasola |
| Kochinchineza Mucuna | Pokrewny Velvetbean |
| Neotonia (glicyna) wrightii | glicyna |
| Pachyrhizus ahipa * | Fasola Yam |
| Pachyrhizus erosus * | Fasola Yam, Jicama, posiekana fasola suey |
| Phaseolus lunatus * | Fasola Buttler, fasola lima |
| Phaseolus vulgaris * | Fasola, zielona fasola |
| Pisum sativum | groszek (zielony) |
| Psophocarpus tetragonolobus | Skrzydlata fasola lub Goa |
| Płatki Pueraria * | Kudzu |
| Puerarua montana var. Łobata * | Kudzu |
| Puerarua phaseoloides | Kudzu tropikalne |
| Minima Rhynchosia | |
| Senes obtusifolia | Chorągiew |
| Senna occidentalis | Kawowy senes |
| Sesbania exaltada | Konopie Colorado River, sesbania konopna, ziarna kawy |
| Sesbania macrocarpa | Konopie torfowe lub z rzeki Kolorado |
| Sesbania vescaria | |
| Trifolium repens | Biała koniczyna |
| Trifolium incarnatum | Karmazynowa koniczyna |
| Trigonella foenum-graicum | Kozieradka |
| Trigonella foenum-gracecum | Kozieradka |
| Vicia angustifolia | Wyka wąskolistna |
| Vicia dasycarpa | Wyka włochata |
| Vicia faba | Bób lub Fava Fasola |
| Vicia narbonensis | Wyka szerokolistna |
| Vicia villosa ssp. Varia | Wyka włochata |
| Vigna mungo | Urd lub czarny gram |
| Vigna promieniować * | fasola mung |
| Vigna unguiculata * | Cowpea, czarnooki groszek, całoroczna fasola |
| Voandzeia subterranea | Orzeszki ziemne Bambara |
*Preferowani gospodarze. Inni żywiciele byli mniej liczni lub zostali określeni eksperymentalnie w sztucznych warunkach.
Objawy
barwie od brązowej do ciemnobrązowej lub czerwonawo-brązowej z jednym do wielu wydatnych, kulistych otworów. Z tych porów tworzą się urediniospory . Na początkowych etapach na powierzchni liścia tworzą się małe żółte plamki. Plamy te można lepiej zaobserwować przy pomocy źródła światła. W miarę postępu choroby na liściach, łodygach , strąkach i ogonkach liściowych zaczynają tworzyć się zmiany chorobowe . Zmiany są początkowo małe, zmieniają kolor z szarego na jasnobrązowy lub brązowy w miarę powiększania się i nasilenia choroby. Wkrótce na zmianach pojawiają się ślady w kształcie wulkanu.
Cykl chorobowy
Phakopsora pachyrhizi to grzyb, który ma zarodnik przenoszony przez wiatr, zwany urediniospore . Zarodniki te różnią się od innych, ponieważ nie potrzebują otwartych aparatów szparkowych ani naturalnych otworów w liściach. Uredinospory są w stanie wniknąć w liść. Krosty są widoczne po 10 dniach i mogą wytwarzać zarodniki przez trzy tygodnie. Choroba osiąga punkt kulminacyjny, gdy roślina zaczyna kwitnąć. Cykl patogenu trwa do momentu defoliacji upraw lub do momentu, gdy środowisko stanie się niekorzystne dla patogenu.
Azjatycka rdza soi jest chorobą policykliczną: w cyklu chorobowym bezpłciowe urediniospory infekują tę samą roślinę. Teliospory (zarodniki płciowe) to przetrwalnikowe zarodniki, które zimują w glebie. Bazydiospory to zarodniki, które są w stanie zanieczyścić alternatywnego żywiciela. Urediniospory potrzebują co najmniej sześciu godzin, aby zainfekować liście w korzystnej temperaturze (między 15 a 24 °C).
Środowisko
Sprzyjające warunki do rozwoju choroby są związane z temperaturą, wilgotnością i wiatrem. Odpowiednia temperatura dla aktywności patogenu wynosi od 12 do 29°C (bardziej wydajna jest między 18 a 26,5°C). Wilgotność musi być wysoka, około 90% lub więcej, przez ponad 12 godzin. Znaczna ilość wiatru jest również ważna, aby patogen mógł przemieszczać się z jednej rośliny na drugą. Obecnie w Stanach Zjednoczonych zainfekowane rośliny można znaleźć na Florydzie, w Georgii, Luizjanie i Teksasie.
Czynniki ryzyka
Uredospory są przenoszone przez wiatr i są wytwarzane obficie na zakażonej tkance soi lub innych żywicieli roślin strączkowych .
Kierownictwo
Choroba jest często zwalczana za pomocą fungicydów : oksykarboksyny , triforyny i trichlopyru .
Phakospsora pachyrhizi jest patogenem, który działa szybko, zanieczyszczając żywiciela. Roślina może zostać poważnie zanieczyszczona w ciągu zaledwie 10 dni. Utrudnia to kontrolowanie choroby, ponieważ nie tylko szybko się rozprzestrzenia, ale także szybko się rozwija. Dlatego ważne jest jak najszybsze wdrożenie technik kontroli.
Odporność genetyczna
Kontrola chemiczna
Drugą formą zarządzania, która może być skuteczna, jest stosowanie fungicydów, ale jest to skuteczne tylko we wczesnych stadiach choroby. Choroba rozprzestrzenia się szybko i trudno ją kontrolować po pewnych stadiach, dlatego ważne jest, aby postępować ostrożnie w pobliżu zarażonych roślin, ponieważ zarodniki mogą przyczepiać się do odzieży i innych materiałów i infekować inne rośliny.
- Kawashima, Cintia G; Guimarães, Gustavo Augusto; Nogueira, Sonia Regina; MacLean, Dan; kucharz, Doug R; Steuernagel, Burkhard; Baek, Jongmin; Bouyioukos, Costas; Melo, Bernardo do VA; Tristao, Gustavo; de Oliveira, Jamile Camargos; Rauscher, Gilda; Mittal, Shipra; Panichelli, Lisa; Bacot, Karen; Johnson, heban; Iyer, Geeta; Tabor, Girma; Wulff, Brande BH; Warda, Eryk; Rairdan, Gregory J.; Broglie, Karen E.; Wu, Gusui; van Esse, H Peter; Jones, Jonathan DG; Brommonschenkel, Sérgio H (25.04.2016). „Gen pigeonpea nadaje soi odporność na azjatycką rdzę sojową” (PDF) . Biotechnologia przyrody . Springer Science and Business Media LLC . 34 (6): 661–665. doi : 10.1038/nbt.3554 . ISSN 1087-0156 . PMID 27111723 . S2CID 25187624 .