Hemoproteus
|
|
| Haemoproteus | |
|---|---|
| H. syrnii | |
| Klasyfikacja naukowa | |
| Królestwo: | Chromista |
| Podkrólestwo: | Harosa |
| Zdrada: | Halwaria |
| supertyp: | pęcherzyki płucne |
| Gromada: | apikompleks |
| Klasa: | Aconoidasida |
| Zamówienie: | Chromatorida |
| Podrząd: | Laveraniina |
| Rodzina: | Haemoproteidae |
| Rodzaj: |
Haemoproteus Kruse, 1890 |
| Gatunek | |
|
Patrz tekst
|
|
Haemoproteus to rodzaj pęcherzyków płucnych pasożytujących na ptakach , gadach i płazach . Jego nazwa pochodzi od greckiego : Haima , „krew” i Proteus , bóg morza, który miał moc przybierania różnych kształtów. Nazwa Haemoproteus została po raz pierwszy użyta w opisie H. columbae we krwi gołębia Columba livia przez Kruse w 1890 r. Był to również pierwszy opis tego rodzaju. Dwa inne rodzaje — Halteridium i Simondia — są obecnie uważane za synonimy Haemoproteus .
Pierwotniaki to wewnątrzkomórkowe pasożyty infekujące erytrocyty . Są przenoszone przez owady wysysające krew, w tym komary , muszki gryzące ( Culicoides ), wszy ( Hippoboscidae ) i gzy (" tabanidy ", "muchy tabanidów"). Infekcja tym rodzajem jest czasami nazywana pseudomalarią ze względu na podobieństwo pasożytów do Plasmodium .
W obrębie rodzaju wyróżnia się co najmniej 173 gatunki , 5 odmian i 1 podgatunek . Spośród nich ponad 140 występuje u ptaków, 16 u gadów i 3 u płazów: reprezentowanych jest 14 rzędów i 50 rodzin ptaków. Należą do nich ptactwo łowne ( Galliformes ), ptactwo wodne ( Anseriformes ), ptaki drapieżne ( Accipitriformes , Falconiformes , Strigiformes ), gołębie i gołębie ( Columbiformes ) oraz ptaki siedzące lub śpiewające ( Paseriformes ).
Taksonomia i systematyka
Ewolucja
Najwcześniejszą znaną skamieniałością jest organizm podobny do Haemoproteus ( Paleohaemoproteus burmacis ) , który znaleziono w jamie brzusznej samicy muszki gryzącej uwięzionej 100 milionów lat temu w bursztynie znalezionym w Myanmarze .
Historia taksonomiczna
Pierwszy opis tego rodzaju został w 1890 roku przez Kruse'a, który opisał H. columbae we krwi gołębia Columba livia . McCallum w 1897 wykazał, że proces eksflagelacji był częścią rozmnażania płciowego u tych pasożytów i uznał za prawdopodobne, że ten sam proces zachodzi u Plasmodium . Pierwsza wzmianka o hemoproteidzie u gada pochodzi od Simonda z 1901 r., który nadał mu nazwę H. metchnikovi . Bracia Sergent w 1906 roku wykazali, że ektopasożytnicza mucha Pseudolynchia canariensis była wektor H. columbae . Aragao w 1908 roku wykazał schizogoniczne stadia H. columbae w komórkach śródbłonka płuc piskląt zakażonych przez ugryzienie zakażonej Pseudolynchii . Powszechnie uważano, że przenoszenie pasożytów odbywa się przez zwracanie pokarmu podczas posiłku z krwią, dopóki Adie nie wykazała, że pasożyty rozwijają się w gruczołach ślinowych w sposób analogiczny do Plasmodium u komarów .
Rodzaj Halterium został stworzony przez francuskiego parazytologa Alphonse Labbe dla gatunku, który obserwował z gametocytami w erytrocytach , z granulkami pigmentu i w pełni uformowanym kształtem kantara. Ten rodzaj został wkrótce włączony do rodzaju Haemoproteus .
Rodzaj Haemocystidium został stworzony, aby nadać nazwę hemoproteidowi gekona należącego do rodzaju Hemidactylus na Sri Lance przez Castellaniego i Willeya w 1904 roku. Drugi gatunek z tego rodzaju został opisany w 1909 roku przez Johnstona i Clelanda, którzy znaleźli pigmentowane gametocyty w krew australijskiego żółwia Chelodina longicollis . Gatunki te zostały przeniesione do Haemoproteus w 1926 roku przez Wenyona.
Rodzaj został wskrzeszony przez Garnhama w 1966 roku, kiedy stworzył nową nazwę rodzajową — Simondia — dla hemoproteidów chelonian . Poszedł za opiniami Wenyona, Hewitta i DeGiustiego i zasugerował, że wszystkie te pasożyty należą do jednego gatunku — Simondia metchnikovi . Zachował nazwę Haemocystidium dla hemoproteidów jaszczurek .
Inny rodzaj wektorów został zidentyfikowany w 1957 roku przez Fallisa i Wooda, kiedy zidentyfikowali H. nettionis u Culicoides downesi Wirth i Hubert w Ontario w Kanadzie.
Levine i Campbell w 1971 roku przenieśli wszystkie gatunki z Simondii i Haemocystidium do Haemoproteus , opinia, za którą podążali kolejni autorzy.
Rodzaj Haemocystidium został ponownie wskrzeszony przez Telforda w 1996 roku, kiedy opisał trzy nowe gatunki pierwotniaków u gekonów z Pakistanu .
Ten rodzaj, podobnie jak wiele pierwotniaków, może być dalej modyfikowany, gdy dostępne będą dodatkowe sekwencje DNA . Na przykład w ostatnich latach zidentyfikowano wiele sekwencji DNA Haemoproteus u ptaków na całym świecie, co doprowadziło do nowej wiedzy na temat nieznanej wcześniej różnorodności tego pasożyta w różnych regionach.
Podrodzaje
Gatunki infekujące ptasich żywicieli podzielono na dwie podgrupy — Haemoproteus i Parahaemoproteus — podział zaproponowany w 1965 r. przez Bennetta i in. . Można je rozróżnić w następujący sposób:
Haemoproteus : wektorami są muchy hipopotamowate ( Hippoboscidae ). Eksflagelacja nie występuje poniżej 20 stopni Celsjusza. Dojrzałe oocysty mają średnicę większą niż 20 mikrometrów. Średnia długość sporozoitów jest mniejsza niż 10 mikrometrów. Jeden koniec sporozoitu jest bardziej spiczasty niż drugi. Chociaż większość z nich to pasożyty z rodziny Columbiformes , niektóre gatunki z tego podrodzaju odnotowano również u siewkowych , pelikanowych i suliformes .
Parahaemoproteus : Pasożyty ptaków innych niż Columbiformes . Wektorami są gryzące muszki ( Ceratopogonidae ). Exflagellation występuje poniżej 20 ° C (68 ° F). Dojrzałe oocysty mają średnicę mniejszą niż 20 mikrometrów. Średnia długość sporozoitów jest większa niż 10 mikrometrów. Oba końce sporozoitu są jednakowo spiczaste.
Chociaż wcześniej uważano, że Haemoproteus ogranicza się do gołębi i gatunków pokrewnych, gatunki tego rodzaju zostały wyizolowane z fregat .
Lista gatunków
|
|
|
Koło życia
Stadium zakaźne to sporozoit obecny w gruczołach ślinowych nosiciela. Gdy wektor ugryzie nowego żywiciela, sporozoity dostają się do krwioobiegu i atakują komórki śródbłonka naczyń krwionośnych w różnych tkankach, w tym w płucach , wątrobie i śledzionie . W komórkach śródbłonka sporozoity ulegają rozmnażaniu bezpłciowemu, stając się schizontami . Te z kolei wytwarzają liczne merozoity które penetrują erytrocytów i dojrzewają do żeńskich gametocytów (makrogametocytów) lub męskich gametocytów (mikrogametocytów). Gametocyty mogą następnie zostać połknięte przez innego owada wysysającego krew, gdzie ulegają rozmnażaniu płciowemu w jelicie środkowym owada w celu wytworzenia oocyst . Oocysty pękają i uwalniają liczne sporozoity, które atakują gruczoł ślinowy i służą jako ognisko późniejszej infekcji dla innego żywiciela, gdy owad zje następny posiłek z krwią.
Opis
krwi znajdują się tylko gametocyty . Rozmnażanie bezpłciowe zachodzi w narządach ciała, zwłaszcza w wątrobie . Organizmy zajmują większość cytoplazmy , pozostawiając centralnie położone jasnopurpurowe, drobnoziarniste, różowe jądro .
Taksonomia tego rodzaju jest trudna, ponieważ istnieje kilka wyraźnych różnic morfologicznych między uznanymi gatunkami. Wiele z nich opisano w ramach hipotezy „jeden gatunek – jeden żywiciel”, co obecnie uważa się za potencjalnie mylące. Cechy morfologiczne najczęściej używane do opisu gatunku obejmują liczbę granulek pigmentu, stopień okrążenia jądra żywiciela, wielkość pasożyta, stopień przemieszczenia jądra żywiciela i stopień powiększenia komórek żywiciela. Badania DNA powinny pomóc w wyjaśnieniu tego obszaru, ale do tej pory były rzadko podejmowane.
Gametocyty mają pięć podstawowych form:
- cienkie gametocyty z niepełnymi brzegami ( H. balearicae , H. pelouri )
- gametocyty halterium ( H. maccullumi )
- grube gametocyty w kształcie kiełbasy, które wypełniają większość komórki gospodarza i wypierają jądro żywiciela na boki ( H. halyconis , H. plataleae )
- gametocyty otaczające jądro gospodarza i wypełniające komórkę gospodarza ( H. telfordi )
- proste gametocyty , które normalnie występują w komórkach bezjądrowych i są prawie tak długie jak komórka gospodarza ( H. enucleator )
Kryteria diagnostyczne
- Gametocyty są obecne tylko w erytrocytach
- Gametocyty mają wygląd „w kształcie kantara” z niewielkim przemieszczeniem jądra gospodarza
- Schizonty nie są widoczne w rozmazach krwi obwodowej
- W erytrocytach obecne są liczne granulki pigmentu ( hemozoina ).
Granulki pigmentu są załamujące światło i mają kolor od żółtego do brązowego.
Patologia
Zakażenia większością gatunków Haemoproteus wydają się powodować zakażenia subkliniczne.
Wyniki sekcji zwłok obejmują powiększenie śledziony , wątroby i nerek . Narządy te mogą mieć czekoladowobrązowy kolor z powodu odkładania się hemozoin. Odciski cytologiczne mogą ujawnić komórki śródbłonka obciążone schizontem. Niektóre gatunki Haemoproteus będą również tworzyć duże, przypominające cysty ciała w mięśniach szkieletowych, które przypominają te obserwowane przy infekcjach gatunku Sarcocystis .
U gołębi zakażonych H. columbae mogą rozwinąć się powiększone żołądki ; i odnotowano anemię .
Stada przepiórek bobwhite ( Colinus virginianus ) mogą zostać zarażone H. lophortyx . Zainfekowane ptaki mogą cierpieć z powodu niechęci do poruszania się, potarganego wyglądu, pokłonów i śmierci. Inne odkrycia obejmują parazytemię i anemię. Duże megaloschizonty mogą być obecne w mięśniach szkieletowych , zwłaszcza ud i pleców. Średnia skumulowana śmiertelność stad, w których wystąpiły ogniska, może przekraczać 20%.
Eksperymentalne zakażenie indyków H. meleagridis skutkowało kulawizną, biegunką, depresją, wycieńczeniem, anoreksją i czasami anemią.
Kaczki piżmowe zarażone H. nettionis cierpiały na kulawizny, duszności i nagłą śmierć.
U innych gatunków ptaków sporadycznie zgłaszano anemię i anoreksję. Co ważne, stale odkrywane są nowe zapisy Haemoproteus i nadal należy je monitorować pod kątem wpływu na stan żywiciela.
Wpływ na wektory
H. columbae zaraża gołębie skalne ( Columba livia ) i jest przenoszona przez muchę hipopotamowatą ( Pseudolynchia canariensis ). Obie płcie nosicieli mogą przenosić pasożyta. Gatunek nadrodziny Hippoboscoidea , do której należy Ps. canariensis należy nie składać jaj . Zamiast tego larwy wykluwają się w macicy , są odżywiane wewnętrznie przez „gruczoły mleczne” i przechodzą przez trzy etapy morfologiczne, zanim zostaną zdeponowane w celu przepoczwarzenia. Przeżywalność samic muszek jest znacznie zmniejszona, gdy zostały zarażone pasożytem. W przeciwieństwie do tego nie obserwuje się wpływu na przeżywalność samców much. Ponadto samice rodzą mniej potomstwa po zakażeniu, ale wydaje się, że nie ma to wpływu na jakość potomstwa.
Rekordy gospodarzy
Ptasi gospodarze
- H. anthi — pliszki żółte ( Motacilla flava )
- H. antigonis — żuraw kanadyjski ( Grus canadensis pratensis )
- H. balearicae — żuraw czarnogłowy ( Balearica pavonina gibbericeps , B. p. pavonina ), żuraw kanadyjski ( Grus canadensis pratensis )
- H. bambusicolae — kuropatwa bambusowa ( Bambusicola thoracica sonorivox )
- H. beckeri — kot szary ( Dumetella carolinensis )
- H. (Parahaemoproteus) belopolskyi — czaple czarne ( Sylvia atricapilla )
- H. bennetti — żółtaczek większy ( Picus flavinucha )
- H. borgesi — dzięcioł rudy ( Picoides borealis )
- H. brachiatus — sokół saker ( Falco cherrug )
- H. bucerotis — dzioborożec czerwonodzioby ( Tockus erythrorhynchus )
- H. (Parahaemoproteus) canachites — cietrzew
- H. (Parahaemoproteus) catharti — sęp indyk ( Cathartes aura )
- H. (Parahaemoproteus) coatneyi — bananaquit ( Coereba flaveola ), wróble białogłowe ( Zonotrichia leucophrys )
- H. (Haemoproteus) columbae — japońskie gołębie czarne ( Columba janthina ), gołębie ( Columba livia ), gołębie ( Columbina talpacoti , Scardafella squammata , Zenaida auriculata ), śmiejące się gołębie ( Stigmatopelia senegalensis ), gołębie białoskrzydłe ( Z. asiatica) asiatica ), gołębie żałobne ( Z. macroura )
- H. (Parahaemoproteus) concavocentralis — grubodziób ( Coccothraustes coccothraustes )
- H. cornuata — barbet kotlarski ( Megalaima haemacephala )
- H. crumenium — bocian leśny ( Mycteria americana )
- H. (Parahaemoproteus) cyanomitrae — słonecznik oliwkowy ( Nectarinia olivacea , Cyanomitra olivacea )
- H. (Parahaemoproteus) danilewskyi — sójki błękitne ( Cyanocitta cristata )
- H. (Parahaemoproteus) desseri — papuga długogłowa ( Psittacula roseata )
- H. dicruri — drongo widłogoniaste ( Dicrurus adsimilis ), drongo czubate ( D. forficatus )
- H. elani - jastrząb Coopera ( Accipiter cooperii ), jastrząb ostry ( A. striatus )
- H. wyłuszczacz — zimorodek ( Ispidina picta )
- H. (Parahaemoproteus) fringillae — srogoskrzydły ( Aimophila carpalis ), zięba domowa ( Carpodacus mexicanus ), grubodziób ( Coccothraustes coccothraustes ), rudzik wschodni ( Copsychus saularis ), ciemnooki juncos ( Junco hyemalis ), pleszka amerykańska ( Setophaga ruticilla )
- H. forresteri — zwojnik o szorstkiej głowie ( Atelornis crossleyi )
- H. gabaldoni — kaczka piżmowa ( Cairina moschata )
- H. (Parahaemoproteus) garnhami — wróble
- H. goodmani — wałek podobny do pitta ( Atelornis pittoides )
- H. greineri — kaczki leśne ( Aix sponsa ), nurogęsie ( Mergus merganser ), łuczniczka zwyczajna ( Aythya ferina )
- H. handai — kakadu czubata mała ( Cacatua sulphurea ), papuga długogłowa ( Psittacula cyanocephala ), papuga obrożna ( Psittacula krameri manillensis )
- H. himalayanus — sybia szorstka ( Heterophasia capistrata )
- H. (Parahaemoproteus) homobelopolskyi — malimbe czerwonogłowy ( Malimbus rubricollis ), tkacz czarnogłowy ( Ploceus melanocephalus ), quelea czerwonodzioba ( Quelea quelea )
- H. (Parahaemoproteus) homopalloris - gajówki leśne ( Phylloscopus sibilatrix )
- H. (Parahaemoproteus) homovelans — dzięcioł szary ( Picus canus )
- H. (Parahaemoproteus) hudaidensis — żołna w niebieską kratkę ( Merops superciliosus persicus Pallas)
- H. ilanpapernai — sowa plamista ( Strix seloputo ), sowa brunatna ( Ninox scutulata )
- H. iwa — fregaty wielkie ( Fregata minor ), fregaty wspaniałe ( F. magnificens )
- H. janovyi — sęp białogrzbiety ( Gyps africanus ), sęp siwy ( Necrosyrtes monachus ), sęp białogłowy ( Trigonoceps occipitalis ) sęp gęsi ( Torgos tracheliotus )
- H. (Haemoproteus) jenniae — mewa jaskółka ( Creagrus furcatus )
- H. khani — drongo czubate ( Dicrurus forficatus )
- H. (Parahaemoproteus) lanii — dzierzba czerwonogrzbieta ( Lanius collurio ), dzierzba leśna ( L. senator )
- H. lari — mewy kaspijskie ( Larus cachinnans )
- H. (Parahaemoproteus) lophortyx — przepiórka kalifornijska ( Callipepla californica ), przepiórka łuskowata ( Callipepla squamata ), przepiórka bobwhite ( Colinus virginianus )
- H. maccallumi — gołębie żałobne ( Zenaida macroura )
- H. macrovacuolatus — gwiżdżąca kaczka czarnobrzucha ( Dendrocygna autumnalis )
- H. madagascariensis — vanga haczykowata ( Vanga curvirostris )
- H. majoris — pleśniawki Swainsona ( Catharus ustulatus ), modraszka ( Cyanistes caeruleus ), muchołówka białoszyja ( Ficedula albicollis ), muchołówka żałobna ( F. hypoleuca )
- H. mansoni — cietrzew ( Dendragapus obscurus ), pardwa ( Lagopus lagopus )
- H. meleagridis — indyk ( Meleagris gallopavo )
- H. (Parahaemoproteus) micronuclearis - malimbe czerwonogłowy ( Malimbus rubricollis ), tkacz czarnogłowy ( Ploceus melanocephalus ), quelea czerwonodzioba ( Quelea quelea )
- H. (Haemoproteus) multipigmentatus — gołąb Galapagos ( Zenaida galapagoensis )
- H. motacillae — pliszki żółte ( Motacilla flava )
- H. (Haemoproteus) multivolutinus - gołąb tamburyn ( Turtur timpanistria )
- H. (Parahaemoproteus) nettionis — kaczka leśna ( Aix sponsa ), cyraneczka niebieskoskrzydła ( Anas discors ), kaczka pekińska ( Anas platyrhynchos ), ogorzałka mała ( Aythya affinis ), kundel zwyczajny ( Aythya ferina ), kaczki obrożne ( Aythya collaris ), kaczka piżmowa ( Cairina moschata ), łabędzie trębacze ( Cygnus buccinator )
- H. nisi — jastrząb Coopera ( Accipiter cooperii ), jastrząb ostry ( A. striatus )
- H. (Parahaemoproteus) nucleofascialis — malimbe czerwonogłowy ( Malimbus rubricollis ), tkacz czarnogłowy ( Ploceus melanocephalus ), quelea czerwonodzioba ( Quelea quelea )
- H. noctuae — sowy śnieżne ( Nyctea scandiaca ), sowa plamista ( Strix occidentalis )
- H. orioli — wilga złocista ( Oriolus oriolus )
- H. oryzivorae — rudzik orientalny ( Copsychus saularis ), srebrnodzioby indyjski ( Lonchura malabarica ), munia trójbarwna ( L. malacca ruboniger ), munia łuskowata ( L. punctulata ), tkacz zatoki ( Ploceus philippinus ), bełkot dżungli ( Turdoides striata) )
- H. palumbus — gołąb ( Columba palumbus palumbus )
- H. pallidus — muchołówka srokata ( Ficedula hypoleuca ), muchołówka obrożna ( F. albicollis )
- H. pallidulus — czarny kapelusz ( Sylvia atricapilla )
- H. parabelopolskyi — czarny kapelusz ( Sylvia atricapilla )
- H. (Haemoproteus) paramultipigmentatus — gołąb pospolity Socorro ( Columbina passerina socorroensis )
- H. passeris — izraelski wróbel domowy ( Passer domesticus biblicus )
- H. pasteris — myna srokata ( Sturnus contra ), myna siwogłowa ( S. malabaricus )
- H. pastoris — szpak niebieskouchy błyszczący ( Lamprotornis chalybaeus ), myna pied ( Sturnus contra )
- H. payevskyi — trzcinnik zwyczajny ( Acrocephalus arundinaceus ), wodniczka błotna ( A. palustris )
- H. (Haemoproteus) piresi — gołąb ( Columba livia )
- H. plataleae — ibis błyszczący ( Plegadis falcinellus )
- H. pratosi — Ahanta francolin ( Francolinus ahantensis )
- H. pratasi — perliczka hełmowa ( Numida meleagris )
- H. prognei — martin purpurowy ( Progne subis )
- H. psittaci — papuga szara ( Psittacus erithacus )
- H. raymundi — słonecznik oliwkowy ( Nectarinia olivacea )
- H. (Haemoproteus) sacharovi — białoskrzydłe gołębie wschodnie ( Zenaida asiatica asiatica ), gołębie żałobne ( Z. macroura )
- H. sangunis — bulwiasta rudowąsata ( Pycnonotus jocosus emeria )
- H. (Parahaemoproteus) sanîosdiasï — kurczak ( Gallus gallus )
- H. silvaï — perliczka ( Numida meleagris mitrata )
- H. sylvae — trzcinnik zwyczajny ( Acrocephalus arundinaceus )
- H. syrnii — puszczyk ( Strix aluco ), sowa plamista ( S. occidentalis ), sowa zwyczajna ( Otus scops )
- H. telfordi — dropie MacQueena ( Chlamydotis macqueenii ), dropie czubate ( Eupodotis ruficrista ), dropie ( Otis tarda )
- H. tendeiroi — dropie MacQueena ( Chlamydotis macqueenii ), dropie czubate ( Eupodotis ruficrista ), dropie ( Otis tarda )
- H. tinnunculi — pustułka amerykańska ( Falco sparverius ), Chimango caracara ( Milvago chimango )
- H. (Haemoproteus) turtur — turkawka ( Streptopelia turtur )
- H. (Parahaemoproteus) vacuolatus — zielona bułka wąsata ( Andropadus latirostris )
- H. (Parahaemoproteus) valkiūnasi - fregaty wielkie ( Fregata minor ), fregaty mniejsze ( F. ariel ), fregaty wniebowstąpienia ( F. aquila )
- H. vangii - vanga z haczykiem ( Vanga curvirostris )
- H. (Parahaemoproteus) velans — dzięcioł czerwonobrzuchy ( Melanerpes carolinus ), dzięcioł czerwonobrzuchy ( Picoides borealis )
- H. zosteropsis — orientalny biały oko ( Zosterops palpebrosa palpebrosa )
Gospodarze gadów
- H. anatolicum — żółw ( Testudo graeca )
- H. balli — kobra egipska ( Naja haje haje )
- H. chelodina — żółw piłokształtny ( Elseya latisternum )
- H. edomensis — jaszczurka ( Agama stellio )
- H. geochelonis — żółw ( Geochelone denticulata )
- H. kopki — cętkowany indyjski gekon domowy ( Hemidactylus brookei ), gekon żabi oko ( Teratoscincus scincus )
- H. mackerrasi - kolczasty gekon Binoe ( Heteronotia binoei )
- H. mesnili — kobra plująca ( Naja nigricollis nigricolli )
- H. metchnikovi — żółw ( Chrysemys picta ), żółw brzuchaty ( Tramchemys scripta )
- H. oedurae — australijski gekon północny aksamitny ( Oedura castelnaui )
- H. peltocephali — żółw rzeczny ( Peltocephalus dumerilianus )
- H. phyllodactyli — gekkonid ( Ptyodactylus elisa )
- H. ptyodactyli - żółty wachlarzowaty gekon Kramera ( Ptyodactylus hasselquistii )
- H. tarentolae — gekon mauretański ( Tarentola mauritanica )
- H. trionyxi — żółw z Gangesu ( Trionyx gangeticus )
Gospodarze płazów
- H. ovalis — żaba krykieta ( Rana limnocharis )
Gospodarze, o których wiadomo, że są zarażeni, ale nie zidentyfikowano gatunku Haemoproteus
- myna pospolita ( Acridotheres tristis )
- Trzcinnik Blytha ( Acrocephalus dumetorum )
- turzycówka ( Acrocephalus schoenobaenus )
- trzcinnik ( Acrocephalus scirpaceus )
- wrzaskliwy trzcinnik ( Acrocephalus stentoreus )
- słonecznik czarnoszyi ( Aethopyga saturata )
- Kuropatwa hiszpańska ( Alectoris rufa )
- orły cesarskie ( Aquila heliaca )
- płótno ( Aythya valisineria )
- biała kakadu ( Cacatua alba )
- Kakadu czubata siarka ( Cacatua galerita )
- gołąb plamisty ( Columba gwinea )
- szama białoruda ( Copsychus malabaricus )
- sójki zielone ( Cyanocorax yncas glaucescens )
- Żołny europejskie ( Merops apiaster )
- łabędź niemy ( Cygnus olor )
- wspaniały rajski ptak ( Diphyllodes magnificus hunsteini )
- munia czerwona ( Estrilda amandava )
- pustułka mała ( Falco naumanni )
- pustułka ( Falco tinnunculus )
- Francolin Swainsona ( Francolinus swainsonii )
- wspaniałe fregaty ( Fregata magnificens )
- zięba ( Fringilla coelebs )
- wzgórze mynah ( Gracula religiosa intermedia )
- dzierzba długoogoniasta ( Lanius schach )
- wspaniały rajski ptak ( Lophorina superba )
- Kanie egipskie ( Milvus migrans aegypticus )
- Guianański kardynał czerwonogłowy ( Paroaria gularis gularis )
- flamingi mniejsze ( Phoeniconaias minor )
- Miodożercy New Holland ( Phylidonyris novaehollandiae )
- tkacz pręgowany ( Ploceus manyar )
- Surinam czubaty oropendola ( Psarocolius decumanus decumanus )
- Montezuma oropendolas ( Psarocolius montezuma )
- Tanager turkusowy guianański ( Tangara mexicana mexicana )
- Tanager niebieskoszyi ( Tangara cyanicollis caeruleocephala )
- ibis święty ( Threskiornis aethiopicus )
- wróble białokoronne ( Zonotrichia leucophrys oriantha )
Wektory
- H. balmorali — Culicoides impunctatus
- H. belopolskyi — Culicoides impunctatus
- H. columbae — Ornithomyia avicularia , Pseudolynchia canariensis
- H. danilewskyi — Culicoides arboricola , Culicoides edeni , Culicoides knowltoni
- H. dolniki — Culicoides impunctatus
- H. fringillae — Culicoides impunctatus
- H. lanii — Culicoides impunctatus
- H. lophortyx — Culicoides bottimeri , Lynchia hirsuta , Stilbometopa impressa
- H. metchinikovi — Chrysops callidus
- H. nettionis — Culicoides downesi
- H. sacharovi — Peseudolynchia maura
- H. syrnii — Ornithomyia avicularia
- H. tartakovskyi — Culicoides impunctatus
- H. turtur — Pseudolynchia canariensis
Ptasie rodziny dotknięte
Koncepcja „jeden żywiciel - jeden gatunek” była pierwotnie używana w taksonomii tego rodzaju, ponieważ wydaje się, że pasożyty są co najmniej umiarkowanie specyficzne dla żywiciela. Po stwierdzeniu, że ta zasada jest błędna, zasugerowano, że gatunki pasożytów ptaków były ograniczone do pojedynczych rodzin ptaków. Z powyższej kontroli rejestrów gospodarzy jasno wynika, że tak nie jest.
Gatunki ptaków, o których wiadomo, że są zakażone, są wymienione poniżej:
Zamów szponiaste
Rodzina Accipitridae
- Jastrząb Coopera ( Accipiter cooperii )
- Jastrząb ostry ( Accipiter striatus )
- Orzeł cesarski wschodni ( Aquila heliaca )
- Sęp białogrzbiety ( Gyps africanus )
- Kania czarna ( Milvus migrans )
- Sęp kapturowy ( Necrosyrtes monachus )
- Sęp białogłowy ( Trigonoceps occipitalis )
- Sęp lapoński ( Torgos tracheliotos )
Rodzina Cathartidae
- Sęp indyk ( Cathartes aura )
Zamów Anseriformes
Rodzina kaczkowate
- Kaczka leśna ( Aix sponsa )
- Cyraneczka niebieskoskrzydła ( Anas discors )
- Kaczka krzyżówka ( Anas platyrhynchos )
- Ogorzałka mała ( Aythya affinis )
- Kaczka obrożna ( Aythya collaris )
- Płótno ( Aythya valisineria )
- Kaczka piżmowa ( Cairina moschata )
- Łabędź trębacz ( Cygnus buccinator )
- Łabędź niemy ( Cygnus olor )
- Gwiżdżąca kaczka czarnobrzucha ( Dendrocygna autumnalis )
- Nurogęś pospolita ( nurogęś Mergus )
Zamów Siewkowe
Rodzina Laridae
- Mewa ogoniasta jaskółka ( Creagrus furcatus )
- Mewa kaspijska ( Larus cachinnans )
Zamów Ciconiiformes
Rodzina Ciconiidae
- Bocian leśny ( Mycteria americana )
Zamów Columbiformes
Rodzina Columbidae
- Gołąb plamisty ( Columba gwinea )
- Gołąb japoński ( Columba janthina )
- Gołąb skalny ( Columba livia )
- Gołąb grzywacz ( Columba palumbus )
- Gołąb pospolity Socorro ( Columbina passerina socorroensis )
- Gołąb rudy ( Columbina talpacoti )
- Gołębica tamburynowa ( Turtur timpanistria )
- Gołąb łuskowaty ( Scardafella squammata )
- Turkawka europejska ( Streptopelia turtur )
- Śmiejący się gołąb ( Stigmatopelia senegalensis )
- Gołąb białoskrzydły ( Zenaida asiatica )
- Gołąb uszaty ( Zenaida auriculata )
- Gołąb z Galapagos ( Zenaida galapagoensis )
- Gołąb żałobny ( Zenaida macroura )
Zamów Coraciiformes
Rodzina Alcedinidae
- Afrykański zimorodek karłowaty ( Ispidina picta )
Rodzina Brachypteraciidae
- Walec szorstkogłowy ( Atelornis crossleyi )
- Pitta jak wałek ziemny ( Atelornis pittoides )
Rodzina Bucerotidae
- Dzioborożec czerwonodzioby ( Tockus erythrorhynchus )
Rodzina Meropidae
- Żołna w niebieską kratkę ( Merops superciliosus )
Zamów Falconiformes
Rodzina Falconidae
- Saker sokół ( Falco cherrug )
- Pustułka mała ( Falco naumanni )
- Pustułka amerykańska ( Falco sparverius )
- Pustułka zwyczajna ( Falco tinnunculus )
- Chimango caracara ( Milvago chimango )
Zamów Galliformes
Rodzina Numididae
- Perliczka w hełmie ( Numida meleagris )
Rodzina Odontophoridae
- Przepiórka kalifornijska ( Callipepla californica )
- Przepiórka łuskowata ( Callipepla squamata )
- Przepiórka Bobwhite ( Colinus virginianus )
Rodzina Phasianidae
- Kuropatwa czerwononoga ( Alectoris rufa )
- Chińska kuropatwa bambusowa ( Bambusicola thoracicus )
- Ahanta frankolin ( Francolinus ahantensis )
- Francolin Swainsona ( Francolinus swainsonii )
- Kurczak ( Gallus gallus )
- Pardwa wierzbowa ( Lagopus lagopus )
- Dziki indyk ( Meleagris gallopavo )
Rodzina Tetraonidae
- Cietrzew ciemny ( Dendragapus obscurus
Zamów Gruiformes
Rodzina Gruidae
- Koronnik czarny ( Balearica pavonina )
- Żuraw kanadyjski ( Grus canadensis )
Rodzina Otidae
- Drop MacQueena ( Chlamydotis macqueenii )
- Drop czubaty ( Eupodotis ruficrista )
- Drop pospolity ( Otis tarda )
Zamów Passeriformes
Rodzina Acrocephalidae
- Trzcinnik wielki ( Acrocephalus arundinaceus )
- Trzcinnik Blytha ( Acrocephalus dumetorum )
- Gajówka bagienna ( Acrocephalus palustris )
- Turzycówka ( Acrocephalus schoenobaenus )
- Trzcinnik ( Acrocephalus scirpaceus )
- Trzcinnik hałaśliwy ( Acrocephalus stentoreus )
Rodzina Corvidae
- sójka błękitna ( Cyanocitta cristata )
- Sójka zielona ( Cyanocorax yncas )
Rodzina Dicruridae
- Drongo widłogoniaste ( Dicrurus adsimilis )
- Drongo czubate ( Dicrurus forficatus )
Rodzina Emberizidae
- Ciemnooki junco ( Junco hyemalis )
- Ryży skrzydlaty wróbel ( Peucaea carpalis )
- Wróbel białokoronny ( Zonotrichia leucophrys )
Rodzina Estrildidae
- Czerwona munia ( Amandava amandava )
- Dziób indyjski ( Euodice malabarica )
- Munia trójkolorowa ( Lonchura malacca )
- Munia łuskowata ( Lonchura punctulata )
Rodzina Fringillidae
- Zięba domowa ( Carpodacus mexicanus )
- Grubodziób zwyczajny ( Coccothraustes coccothraustes )
- Zięba ( Fringilla coelebs )
Rodzina Hirundinidae
- Oknówka purpurowa ( Progne subis )
Rodzina Icteridae
- Oropendola czubata ( Psarocolius decumanus )
- Montezuma oropendola ( Psarocolius montezuma )
Rodzina Laniidae
- Dzierzba czerwonogrzbieta ( Lanius collurio )
- Dzierzba długoogoniasta ( Lanius schach )
- Leśna dzierzba ( senator Lanius )
Rodzina Meliphagidae
- Miodożercy New Holland ( Phylidonyris novaehollandiae )
Rodzina Mimidae
- Kot szary ( Dumetella carolinensis )
Rodzina Motacillidae
- Pliszka żółta ( Motacilla flava )
Rodzina Muscicapidae
- Szama biała ( Copsychus malabaricus )
- Rudzik orientalny ( Copsychus saularis )
Rodzina Nectariniidae
- Słonecznik czarnoszyi ( Aethopyga saturata )
- Słonecznik oliwkowy ( Cyanomitra olivacea )
Rodzina Oriolidae
- Wilga złocista ( Oriolus oriolus )
Rodzina Paridae
- Modraszka ( Cyanistes caeruleus )
Rodzina Paradisaeidae
- Wspaniały rajski ptak ( Cicinnurus magnificus )
- Wspaniały rajski ptak ( Lophorina superba )
Rodzina Parulidae
- Pleszka amerykańska ( Setophaga ruticilla )
Rodzina Passeridae
- Wróbel domowy ( Passer domesticus )
Rodzina Ploceidae
- Malimbe czerwonogłowy ( Malimbus rubricollis )
- Tkacz pręgowany ( Ploceus manyar )
- Tkacz czarnogłowy ( Ploceus melanocephalus )
- Tkacz Baya ( Ploceus philippinus )
- Quelea czerwonodzioba ( Quelea quelea )
Rodzina Pycnonotidae
- Bulbul wąsaty żółty ( Andropadus latirostris )
- Cebula czerwonowąsata ( Pycnonotus jocosus )
Rodzina Sturnidae
- Myna pospolita ( Acridotheres tristis )
- Myna pospolita ( Gracula religiosa )
- Szpak kasztanowaty ( Sturnia malabarica )
- Szpak srokaty ( Sturnus contra )
- Błyszczący szpak wielkokwiatowy ( Lamprotornis chalybaeus )
Rodzina Sylviidae
- Kapelusznik ( Sylvia atricapilla )
Rodzina Traupidae
- bananowiec ( Coereba flaveola )
- Kardynał czerwonogłowy ( Paroaria gularis )
- Tanager niebieskoszyi ( Tangara cyanicollis )
- Tanager turkusowy ( Tangara mexicana )
Rodzina Timaliidae
- Sibia ruda ( Heterophasia capistrata )
- Bełkot dżungli ( Turdoides striata )
Rodzina Turdidae
- Drozd Swainsona ( Catarus ustulatus )
Rodzina Vangidae
- Vanga z hakiem ( Vanga curvirostris )
Rodzina Zosteropidae
- Orientalne białe oko ( Zosterops palpebrosus )
Zamów pelikanowe
Rodzina Fregatidae
- Fregata wspaniała ( Fregata magnificens )
- Fregata wielka ( Fregata minor )
Rodzina Threskiornithidae
- Afrykański święty ibis ( Threskiornis aethiopicus )
- Błyszczący ibis ( Plegadis falcinellus )
Zamów Piciformes
Rodzina Megalaimidae
- Barbet Coppersmith ( Megalaima haemacephala )
Rodzina Picidae
- Dzięcioł czerwonobrzuchy ( Melanerpes carolinus )
- Dzięcioł rudy ( Picoides borealis )
- Dzięcioł szary ( Picus canus )
- Żółtodziób większy ( Picus flavinucha )
Zamów Phoenicopteriformes
Rodzina Phoenicopteridae
- Flaming mały ( Phoenicopterus minor )
Zamów papugowate
Rodzina Cacatuidae
- Kakadu biała ( Cacatua alba )
- Kakadu czubata siarka ( Cacatua galerita )
- Żółta kakadu czubata ( Cacatua sulphurea )
Rodzina Psittacidae
- Papużka śliwkowa ( Psittacula cyanocephala )
- Papuga obrączkowana ( Psittacula krameri )
- Papuga długoogonowa ( Psittacula roseata )
- Afrykańska papuga szara ( Psittacus erithacus )
Zamów Strigiformes
Rodzina Strigidae
- Sowa śnieżna ( Bubo scandiacus )
- Jastrząb brunatny ( Ninox scutulata )
- Sowa europejska ( Otus scops )
- Sowa brunatna ( Strix aluco )
- Sowa plamista ( Strix occidentalis )
- Sowa plamista ( Strix seloputo )
Notatki
Haemoproteus balazuci Dias 1953 jest młodszym synonimem H. testudinalis
Haemoproteus gymnorhidis de Mello 1936, Haemoproteus granulosum Rey Vila 1945, Haemoproteus danilewskyi var. urbanensis Sachs 1953 i Haemoproteus zasukhini Burtikashvili 1973 są uważane za synonimy H. passeris Kruse 1890.
Haemoproteus rouxi Novy i MacNeal 1904 to nomen nudum .