Symporter chlorku potasu 5
Identyfikatory | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
SLC12A5 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
, KCC2, symporter chlorku potasu 5, EIEE34, EIG14, hKCC2, rodzina nośników substancji rozpuszczonych 12 członków 5, | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
zewnętrzne identyfikatory DEE34 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Wikidane | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Element transportera chlorku potasu 5 (alias: KCC2 i SLC12A5) jest specyficznym dla neuronów symporterem chlorku potasu odpowiedzialnym za ustanowienie gradientu jonów chlorkowych w neuronach poprzez utrzymanie niskich stężeń chlorków wewnątrzkomórkowych. Jest krytycznym mediatorem hamowania synaptycznego , ochrony komórek przed ekscytotoksycznością i może również działać jako modulator neuroplastyczności . Element transportera chlorku potasu 5 jest również znany pod nazwami: KCC2 (kotransporter chlorku potasu 2) ze względu na jego substraty jonowe oraz SLC12A5 ze względu na swoje genetyczne pochodzenie z genu SLC12A5 u ludzi.
Zwierzęta z obniżoną ekspresją tego transportera wykazują poważne deficyty motoryczne, aktywność padaczkową i spastyczność. Zwierzęta z nokautem KCC2 , u których KCC2 jest całkowicie nieobecne, umierają po urodzeniu z powodu niewydolności oddechowej.
Lokalizacja
KCC2 jest specyficznym dla neuronów białkiem błonowym wyrażanym w ośrodkowym układzie nerwowym , w tym w hipokampie, podwzgórzu, pniu mózgu i neuronach ruchowych brzusznego rdzenia kręgowego.
Na poziomie subkomórkowym KCC2 stwierdzono w błonach somaty i dendrytach neuronów , bez dowodów ekspresji na aksonach . Wykazano również, że KCC2 kolokalizuje z receptorami GABA A , które służą jako kanały jonowe bramkowane ligandem, umożliwiające ruch jonów chlorkowych przez błonę komórkową. W normalnych warunkach otwarcie receptorów GABA A umożliwia hiperpolaryzujący napływ jonów chlorkowych w celu zahamowania odpalania neuronów postsynaptycznych.
Wbrew intuicji wykazano również, że KCC2 kolokalizuje w synapsach pobudzających . Jednym z sugerowanych wyjaśnień takiej kolokalizacji jest potencjalna ochronna rola KCC2 przed ekscytotoksycznością. Napływ jonów w wyniku pobudzającej stymulacji synaptycznej kanałów jonowych w błonie neuronalnej powoduje pęcznienie osmotyczne komórek, gdy woda jest wciągana wraz z jonami. KCC2 może pomóc wyeliminować nadmiar jonów z komórki w celu przywrócenia homeostazy osmotycznej .
Struktura
KCC2 jest członkiem nadrodziny białek kotransporterów kationowo-chlorkowych (CCC) .
Podobnie jak w przypadku wszystkich białek CCC, KCC2 jest integralnym białkiem błonowym z 12 domenami transbłonowymi i zarówno N-, jak i C-końcowymi domenami cytoplazmatycznymi. Końcowe domeny cytoplazmatyczne mogą być fosforylowane przez kinazy w neuronie w celu szybkiej regulacji.
Dwie izoformy: KCC2a, KCC2b
Istnieją dwie izoformy KCC2: KCC2a i KCC2b. Dwie izoformy powstają z alternatywnych promotorów genu SLC12A5 i różnicowego splicingu pierwszego eksonu mRNA. Izoformy różnią się N-końcami, przy czym forma KCC2a stanowi większy z dwóch wariantów składania.
Poziomy KCC2a pozostają względnie stałe podczas rozwoju przed- i poporodowego.
Z drugiej strony KCC2b jest rzadko obecny podczas rozwoju prenatalnego i jest silnie regulowany w górę podczas rozwoju postnatalnego. Uważa się, że regulacja w górę ekspresji KCC2b jest odpowiedzialna za „zmianę rozwojową” obserwowaną u ssaków, od depolaryzujących efektów postsynaptycznych synaps hamujących we wczesnych sieciach neuronowych do efektów hiperpolaryzujących w dojrzałych sieciach neuronowych.
Myszy z nokautem KCC2b mogą przeżyć do 17 dnia po urodzeniu (P17) dzięki obecności samego funkcjonalnego KCC2a, ale wykazują niską masę ciała, deficyty motoryczne i uogólnione napady padaczkowe. Całkowite nokauty KCC2 (nieobecne zarówno KCC2a, jak i KCC2b) umierają po urodzeniu z powodu niewydolności oddechowej.
oligomeryzacja
Obie izoformy KCC2 mogą tworzyć homomultimery lub heteromultimery z innymi symporterami K-Cl na błonie komórkowej w celu utrzymania homeostazy chlorków w neuronach. Dimery, trimery i tetramery z udziałem KCC2 zidentyfikowano w neuronach pnia mózgu. Oligomeryzacja może odgrywać ważną rolę w funkcji transportera i aktywacji, ponieważ zaobserwowano, że stosunek oligomeru do monomeru wzrasta w korelacji z rozwojem gradientu jonów chlorkowych w neuronach.
Zmiany rozwojowe w ekspresji
Poziomy KCC2 są niskie podczas rozwoju embrionalnego ssaków, kiedy sieci neuronowe wciąż są tworzone, a neurony są wysoce plastyczne (zmienne). Na tym etapie wewnątrzkomórkowe stężenia jonów chlorkowych są wysokie ze względu na niską ekspresję KCC2 i wysokie poziomy transportera znanego jako NKCC1 ( kotransporter chlorkowy Na + /K + 1), który przenosi jony chlorkowe do komórek. Zatem podczas rozwoju embrionalnego gradient chlorków jest taki, że stymulacja receptorów GABA A i receptorów glicynowych w synapsach hamujących powoduje wypływ jonów chlorkowych z komórek, powodując, że wewnętrzne środowisko neuronalne jest mniej negatywne (tj. bardziej zdepolaryzowane ) niż w stanie spoczynku . Na tym etapie receptory GABA A i receptory glicyny działają raczej pobudzająco niż hamująco na neurony postsynaptyczne, powodując depolaryzację i nadpobudliwość sieci neuronowych.
Podczas rozwoju poporodowego poziomy KCC2 są silnie regulowane w górę, podczas gdy poziomy NKCC1 są regulowane w dół. Ta zmiana ekspresji koreluje z rozwojową zmianą stężenia jonów chlorkowych w neuronach z wysokiego do niskiego stężenia wewnątrzkomórkowego. Skutecznie, gdy stężenie jonów chlorkowych zmniejsza się, gradient chlorków w poprzek błony komórkowej ulega odwróceniu, tak że stymulacja receptora GABA A i receptora glicyny powoduje napływ jonów chlorkowych, powodując, że wewnętrzne środowisko neuronalne jest bardziej negatywne (tj. bardziej hiperspolaryzowane ) niż byłoby w odpoczynek. Jest to rozwojowe przesunięcie synaps hamujących z pobudzających odpowiedzi postsynaptycznych we wczesnej fazie rozwoju neuronów do hamujących odpowiedzi postsynaptycznych obserwowanych przez cały okres dojrzałości.
Funkcjonować
Aktualna literatura sugeruje, że KCC2 pełni trzy podstawowe role w neuronach:
- Ustalenie gradientu jonów chlorkowych niezbędnego do hamowania postsynaptycznego
- Ochrona sieci neuronowych przed ekscytotoksycznością wywołaną stymulacją
- Przyczynianie się do morfogenezy kręgosłupa dendrytycznego i glutaminergicznej funkcji synaptycznej
Hamowanie postsynaptyczne
KCC2 jest symporterem potasu (K + )/chlorku (Cl- ) , który utrzymuje homeostazę chlorków w neuronach. Elektrochemiczny gradient chlorków ustanowiony przez aktywność KCC2 ma kluczowe znaczenie dla klasycznego hamowania postsynaptycznego poprzez receptory GABA A i receptory glicynowe w ośrodkowym układzie nerwowym. KCC2 wykorzystuje gradient potasu generowany przez pompę Na + /K + do napędzania ekstruzji chlorków z neuronów. W rzeczywistości każde zakłócenie neuronalnego gradientu K + pośrednio wpłynęłoby na aktywność KCC2.
Utrata KCC2 po uszkodzeniu neuronów (tj. niedokrwieniu , uszkodzeniu rdzenia kręgowego, fizycznym urazie ośrodkowego układu nerwowego) powoduje utratę regulacji hamującej i późniejszy rozwój nadpobudliwości neuronów, spastyczności ruchowej i aktywności podobnej do drgawek, ponieważ receptory GABA A i Receptory glicyny powracają z hiperpolaryzujących do depolaryzujących efektów postsynaptycznych.
Ochrona komórkowa
Wysokie poziomy stymulacji i późniejszy napływ jonów przez aktywowane kanały jonowe mogą powodować pęcznienie komórek, ponieważ woda związana osmotycznie jest wciągana do neuronów wraz z jonowymi substancjami rozpuszczonymi. Zjawisko to znane jest jako ekscytotoksyczność. Wykazano, że KCC2 jest aktywowany przez pęcznienie komórek i dlatego może odgrywać rolę w eliminowaniu nadmiaru jonów po okresach wysokiej stymulacji w celu utrzymania stałej objętości neuronów i zapobiegania pękaniu komórek.
Ta rola może również wyjaśniać fakt, że wiadomo, że KCC2 kolokalizuje w pobliżu synaps pobudzających, mimo że jego podstawową rolą jest ustalenie gradientu chlorków dla hamowania postsynaptycznego.
Morfogeneza i funkcja synaps glutaminergicznych
Oprócz kontrolowania skuteczności synaps GABAergicznych poprzez homeostazę chlorków, KCC2 odgrywają kluczową rolę w morfogenezie i funkcji synaps glutaminergicznych w ośrodkowym układzie nerwowym. Badania hipokampa u zwierząt z nokautem KCC2 wykazały, że neurony pozbawione KCC2 mają zahamowany wzrost dendrytyczny i zniekształcone kolce dendrytyczne. Ostatnie badania pokazują, że KCC2 odgrywa kluczową rolę w strukturze i funkcji kolców dendrytycznych, w których znajduje się większość synaps pobudzających w neuronach korowych. Poprzez interakcję z cytoszkieletem aktynowym, KCC2 tworzy barierę molekularną dla dyfuzji białek transbłonowych w kolcach dendrytycznych, regulując w ten sposób lokalne ograniczenie receptorów AMPA i siłę synaptyczną.
Zaproponowano, że obniżenie poziomu KCC2 obserwowane po urazie neuronów i wynikające z tego przesunięcie depolaryzacyjne synaps, w których pośredniczy GABA A , może być aspektem odróżnicowania neuronów. Odróżnicowanie uszkodzonych części układu nerwowego pozwoliłoby sieciom neuronowym powrócić do wyższych poziomów plastyczności w celu ponownego okablowania neuronów, które przeżyły, aby zrekompensować uszkodzenia w sieci. Ponadto zmniejszona transmisja glutaminergiczna po obniżeniu poziomu KCC2 może służyć jako proces homeostatyczny do kompensacji zmniejszonej transmisji GABA z powodu zmienionego wytłaczania chlorków.
Onkogeneza
Mutacje w SLC12A5 są związane z rakiem okrężnicy .
Rozporządzenie
Regulacja transkrypcji: sygnalizacja receptora TrkB
KCC2 ulega obniżeniu transkrypcji po uszkodzeniu ośrodkowego układu nerwowego przez kaskadę transdukcji sygnału receptora TrkB (aktywowaną przez BDNF i NT-4/5 ).
Regulacja potranslacyjna: fosforylacja
Tradycyjnie uważa się, że fosforylacja inaktywuje lub zmniejsza regulację KCC2, jednak niedawne dowody sugerują, że fosforylacja w różnych miejscach białka KCC2 determinuje różne wyniki regulacji:
- Fosforylacja Wnk1 / Wnk3 i kinazy tyrozynowej (tj. TrkB ) obniża aktywność KCC2.
- PKC C-końcowej reszty Ser940 białka KCC2 zwiększa aktywność KCC2 poprzez zwiększenie stabilności powierzchni. Odwrotnie, defosforylacja Ser940 prowadzi do zwiększonej dyfuzji błonowej i endocytozy KCC2.
KCC2 ma niezwykle wysoki wskaźnik obrotu w plazmalemmie (minuty), co sugeruje, że fosforylacja służy jako główny mechanizm szybkiej regulacji.
Regulacja w dół zależna od aktywności
KCC2 jest regulowany w dół przez pobudzającą aktywność glutaminianu na aktywność receptora NMDA i napływ Ca2 + . Proces ten obejmuje szybką defosforylację na Ser940 i rozszczepienie KCC2 przez proteazę kalpainy, co prowadzi do zwiększonej dyfuzji błonowej i endocytozy transportera, jak wykazano w eksperymentach z wykorzystaniem śledzenia pojedynczych cząstek .
Uwalnianie glutaminianu zachodzi nie tylko w synapsach pobudzających, ale wiadomo, że występuje również po uszkodzeniu neuronów lub urazie niedokrwiennym. Zatem regulacja w dół zależna od aktywności może być podstawowym mechanizmem, za pomocą którego następuje regulacja w dół KCC2 po uszkodzeniu ośrodkowego układu nerwowego.
Zobacz też
Dalsza lektura
- Chevy Q, Heubl M, Goutierre M, Backer S, Moutkine I, Eugène E, Bloch-Gallego E, Lévi S, Poncer JC (2013). „KCC2 Bramki Ruch receptorów AMPA oparty na aktywności poprzez fosforylację kofiliny” . Journal of Neuroscience . 6 (48): 15772–86. doi : 10.1523/JNEUROSCI.1735-15.2015 . PMC 6605455 . PMID 26631461 .
- Chamma I, Chevy Q, Poncer JC, Levi S (2015). „Rola neuronalnego kotransportera KCC2 KCC2 w hamującym i pobudzającym neuroprzekaźnictwie” . Neuronauka o komórkach przednich . 35 : 15772–86. doi : 10.3389/fncel.2012.00005 . PMC 3282916 . PMID 22363264 .
- Hebert SC, Mount DB, Gamba G (2004). „Fizjologia molekularna kotransportu Cl - sprzężonego z kationami : rodzina SLC12”. Łuk Pflügera . 447 (5): 580–93. doi : 10.1007/s00424-003-1066-3 . PMID 12739168 . S2CID 21998913 .
- Rivera C, Voipio J, Kaila K (2005). „Dwa przełączniki rozwojowe w sygnalizacji GABAergicznej: kotransporter K + -Cl - KCC2 i anhydraza węglanowa CAVII” . J. Physiol . 562 (cz. 1): 27–36. doi : 10.1113/jphysiol.2004.077495 . PMC 1665491 . PMID 15528236 .
- Andersson B, Wentland MA, Ricafrente JY i in. (1996). „Metoda„ podwójnego adaptera ”do ulepszonej konstrukcji biblioteki strzelb”. Analny. Biochem . 236 (1): 107–13. doi : 10.1006/abio.1996.0138 . PMID 8619474 .
- Yu W, Andersson B, Worley KC, Muzny DM, Ding Y, Liu W, Ricafrente JY, Wentland MA, Lennon G, Gibbs RA (kwiecień 1997). „Sekwencjonowanie cDNA na dużą skalę” . Genom Res . 7 (4): 353–8. doi : 10.1101/gr.7.4.353 . PMC 139146 . PMID 9110174 .
- Hirosawa M, Nagase T, Ishikawa K, Kikuno R, Nomura N, Ohara O (październik 1999). „Charakterystyka klonów cDNA wybranych za pomocą analizy GeneMark z bibliotek cDNA frakcjonowanych pod względem wielkości z ludzkiego mózgu” . DNA Res . 6 (5): 329–36. doi : 10.1093/dnares/6.5.329 . PMID 10574461 .
- Hübner CA, Stein V, Hermans-Borgmeyer I, Meyer T, Ballanyi K, Jentsch TJ (maj 2001). „Zakłócenie KCC2 ujawnia istotną rolę kotransportu K-Cl już we wczesnym hamowaniu synaptycznym”. neuron . 30 (2): 515–24. CiteSeerX 10.1.1.476.2965 . doi : 10.1016/S0896-6273(01)00297-5 . PMID 11395011 . S2CID 4971832 .
- Sallinen R, Tornberg J, Putkiranta M, Horelli-Kuitunen N, Airaksinen MS, Wessman M (2001). „Lokalizacja chromosomalna SLC12A5 / Slc12a5, ludzkich i mysich genów dla specyficznego dla neuronów kotransportera K (+) -Cl (-) (KCC2) definiuje nowy region konserwowanej homologii”. Cytogenet. Genet komórkowy . 94 (1–2): 67–70. doi : 10.1159/000048785 . PMID 11701957 . S2CID 33299788 .
- Song L, Mercado A, Vázquez N, Xie Q, Desai R, George AL, Gamba G, Mount DB (czerwiec 2002). „Charakterystyka molekularna, funkcjonalna i genomowa ludzkiego KCC2, neuronalnego kotransportera KCl”. Mózg Res. Mol. Mózg Res . 103 (1–2): 91–105. doi : 10.1016/S0169-328X(02)00190-0 . PMID 12106695 .
- Bräuer M, Frei E, Claes L, Grissmer S, Jäger H (lipiec 2003). „Wpływ aktywności kotransportera KCl na aktywację wrażliwych na objętość kanałów Cl w ludzkich osteoblastach” . Jestem. J. Physiol., Cell Physiol . 285 (1): C22–30. doi : 10.1152/ajpcell.00289.2002 . PMID 12637262 .
- Lee H, Chen CX, Liu YJ, Aizenman E, Kandler K (maj 2005). „Ekspresja KCC2 w niedojrzałych neuronach korowych szczura jest wystarczająca do zmiany polaryzacji odpowiedzi GABA” . Eur. J. Neurosci . 21 (9): 2593-9. doi : 10.1111/j.1460-9568.2005.04084.x . PMC 2945502 . PMID 15932617 .
- Mercado A, Broumand V, Zandi-Nejad K, Enck AH, Mount DB (styczeń 2006). „Domena C-końcowa w KCC2 nadaje konstytutywny kotransport K + -Cl-” . J. Biol. chemia . 281 (2): 1016–26. doi : 10.1074/jbc.M509972200 . PMID 16291749 .
- Vanhatalo S, Palva JM, Andersson S, Rivera C, Voipio J, Kaila K (grudzień 2005). „Powolne przejściowe aktywności endogenne i rozwojowa ekspresja kotransportera K + -Cl- 2 w niedojrzałej korze ludzkiej”. Eur. J. Neurosci . 22 (11): 2799–804. doi : 10.1111/j.1460-9568.2005.04459.x . PMID 16324114 . S2CID 37264065 .
- Lee HH, Walker JA, Williams JR, Goodier RJ, Payne JA, Moss SJ (październik 2007). „Bezpośrednia fosforylacja zależna od kinazy białkowej C reguluje stabilność powierzchni komórki i aktywność kotransportera chlorku potasu KCC2” . J. Biol. chemia . 282 (41): 29777–84. doi : 10.1074/jbc.M705053200 . PMID 17693402 .
- Uvarov P, Ludwig A, Markkanen M, Pruunsild P, Kaila K, Delpire E, Timmusk T, Rivera C, Airaksinen MS (październik 2007). „Nowa N-końcowa izoforma specyficznego dla neuronów kotransportera K-Cl KCC2” . J. Biol. chemia . 282 (42): 30570–6. doi : 10.1074/jbc.M705095200 . PMID 17715129 .
Linki zewnętrzne
- Jak uraz mózgu prowadzi do napadów padaczkowych, problemy z pamięcią - wiadomości medyczne, 20.10.2006.
Ten artykuł zawiera tekst z Narodowej Biblioteki Medycznej Stanów Zjednoczonych , która jest własnością publiczną .