Dehydrogenaza bursztynianowa

dehydrogenaza bursztynianowa (oksydoreduktaza bursztynianowo-ubichinonowa)
Succinate Dehydrogenase 1YQ3 and Membrane.png
Struktura SQR w błonie fosfolipidowej. SdhA , SdhB , SdhC i SdhD
Identyfikatory
nr WE 1.3.5.1
nr CAS 9028-11-9
Bazy danych
IntEnz Widok IntEnz
BRENDA Wpis BRENDY
ExPASy Widok NiceZyme
KEGG Wpis KEGG
MetaCyc szlak metaboliczny
PRYM profil
Struktury PDB RCSB PDB PDBe PDB suma
Ontologia genów AmiGO / QuickGO
Szukaj
PKW artykuły
PubMed artykuły
NCBI białka
Identyfikatory
dehydrogenazy bursztynianowej
Symbol Zespół oddechowy II
Nadrodzina OPM 3
Białko OPM 1zoj
Błona 656

Dehydrogenaza bursztynianowa ( SDH ) lub reduktaza koenzymu Q bursztynianu ( SQR ) lub kompleks oddechowy II to kompleks enzymatyczny występujący w wielu komórkach bakteryjnych oraz w wewnętrznej błonie mitochondrialnej eukariontów . Jest to jedyny enzym biorący udział zarówno w cyklu kwasu cytrynowego , jak i łańcuchu transportu elektronów . Analiza histochemiczna wykazująca wysoki poziom dehydrogenazy bursztynianowej w mięśniach wykazuje wysoką zawartość mitochondriów i wysoki potencjał oksydacyjny.

W etapie 6 cyklu kwasu cytrynowego SQR katalizuje utlenianie bursztynianu do fumaranu z redukcją ubichinonu do ubichinolu . Dzieje się tak w wewnętrznej błonie mitochondrialnej poprzez połączenie tych dwóch reakcji.

Struktura

Obraz 5: Podjednostki dehydrogenazy bursztynianowej

podjednostki

Mitochondrialne i wiele bakteryjnych SQR składa się z czterech strukturalnie różnych podjednostek : dwóch hydrofilowych i dwóch hydrofobowych . Pierwsze dwie podjednostki, flawoproteina (SdhA) i białko żelazowo-siarkowe (SdhB), tworzą hydrofilową głowę, w której zachodzi aktywność enzymatyczna kompleksu. SdhA zawiera kowalencyjnie przyłączony kofaktor dinukleotydu flawinoadeninowego (FAD) i miejsce wiązania bursztynianu a SdhB zawiera trzy klastry żelazowo-siarkowe: [2Fe-2S], [4Fe-4S] i [3Fe-4S]. Drugie dwie podjednostki to hydrofobowe podjednostki kotwiczące w błonie, SdhC i SdhD. Ludzkie mitochondria zawierają dwie różne izoformy SdhA (podjednostki Fp typu I i typu II), izoformy te występują również w Ascaris suum i Caenorhabditis elegans . Podjednostki tworzą związany z błoną cytochromu b z sześcioma helisami przezbłonowymi zawierającymi jedną grupę hemu b i miejsce wiązania ubichinonu . Dwie fosfolipidów , jedna kardiolipina i jedna fosfatydyloetanoloamina znajdują się również w podjednostkach SdhC i SdhD (nie pokazano na rysunku). Służą do zajmowania przestrzeni hydrofobowej poniżej hemu b. Te podjednostki są pokazane na załączonym obrazku. SdhA to kolor zielony, SdhB to turkusowy, SdhC to fuksja, a SdhD to żółty. Wokół SdhC i SdhD znajduje się błona fosfolipidowa z przestrzenią międzybłonową u góry obrazu.

Tabela składu podjednostki

NIE. Nazwa podjednostki Białko ludzkie Opis białka z UniProt Pfam z ludzkim białkiem
1 SdhA SDHA _CZŁOWIEK Podjednostka flawoproteiny dehydrogenazy bursztynianowej [ubichinonu], mitochondrialna Pfam PF00890 , Pfam PF02910
2 SdhB SDHB _CZŁOWIEK Dehydrogenaza bursztynianowa [ubichinon] podjednostka żelaza i siarki, mitochondrialna Pfam PF13085 , Pfam PF13183
3 SdhC C560_CZŁOWIEK Podjednostka dehydrogenazy bursztynianowej cytochromu b560, mitochondrialna Pfam PF01127
4 SdhD DHSD_HUMAN Dehydrogenaza bursztynianowa [ubichinon] mała podjednostka cytochromu b, mitochondrialna Pfam PF05328

Miejsce wiązania ubichinonu

Na SDH ssaków można rozpoznać dwa charakterystyczne miejsca wiązania ubichinonu - macierzowo-proksymalną QP i macierzowo-dystalną QD . Miejsce wiązania ubichinonu Qp, które wykazuje większe powinowactwo do ubichinonu, znajduje się w luce złożonej z SdhB, SdhC i SdhD. Ubichinon jest stabilizowany łańcuchami bocznymi His207 podjednostki B, Ser27 i Arg31 podjednostki C oraz Tyr83 podjednostki D. Pierścień chinonu jest otoczony przez Ile28 podjednostki C i Pro160 podjednostki B. Reszty te wraz z Il209, Trp163 i Trp164 podjednostki B oraz Ser27 (atom C) podjednostki C tworzą hydrofobowe środowisko kieszeni Qp wiążącej chinon . Natomiast miejsce wiązania ubichinonu QD , które znajduje się bliżej przestrzeni międzybłonowej, składa się wyłącznie z SdhD i ma mniejsze powinowactwo do ubichinonu.

Miejsce wiązania bursztynianu

SdhA zapewnia miejsce wiązania dla utleniania bursztynianu . Łańcuchy boczne Thr254, His354 i Arg399 podjednostki A stabilizują cząsteczkę, podczas gdy FAD utlenia i przenosi elektrony do pierwszego z klastrów żelazowo-siarkowych [2Fe-2S]. Można to zobaczyć na obrazku 5.

centra redoks

Miejsce wiązania bursztynianu i miejsce wiązania ubichinonu są połączone łańcuchem centrów redoks, w tym FAD i skupisk żelaza i siarki . Łańcuch ten rozciąga się na ponad 40 Å poprzez monomer enzymu . Wszystkie odległości od krawędzi do krawędzi między centrami są mniejsze niż sugerowana granica 14 Å dla fizjologicznego transferu elektronów . Ten transfer elektronów pokazano na obrazku 8.

Montaż i dojrzewanie

Wszystkie podjednostki ludzkiego mitochondrialnego SDH są kodowane jądrowo. Po translacji SDHA jest translokowana jako apoproteina do macierzy mitochondrialnej. Następnie jednym z pierwszych etapów jest kowalencyjne przyłączenie kofaktora FAD ( kowalencyjna flawinylacja). Proces ten jest wzmocniony przez czynnik składania dehydrogenazy bursztynianowej 2 ( SDHAF2 ; zwany także Sdh5 u drożdży i SdhE u bakterii) oraz przez niektóre półprodukty cyklu Krebsa. Fumaran najsilniej stymuluje kowalencyjną flawinylację SDHA. Poprzez badania układu bakteryjnego wykazano, że mechanizm przyłączania FAD obejmuje związek pośredni chinon: metid. W zespole mitochondrialnym, ale nie bakteryjnym, SDHA oddziałuje z drugim czynnikiem składania zwanym czynnikiem składania dehydrogenazy bursztynianowej 4 (SDHAF4; zwany Sdh8 u drożdży), zanim zostanie wstawiony do końcowego kompleksu.

Grupy prostetyczne Fe-S podjednostki SDHB są wstępnie formowane w macierzy mitochondrialnej przez kompleks białkowy ISU. Uważa się również, że kompleks jest zdolny do wstawiania klastrów żelazowo-siarkowych w SDHB podczas jego dojrzewania. Badania sugerują, że wstawienie klastra Fe-S poprzedza tworzenie dimeru SDHA-SDHB. Takie włączenie wymaga redukcji cysteiny w miejscu aktywnym SDHB. Zarówno zredukowane reszty cysteiny, jak i już wbudowane klastry Fe-S są bardzo podatne na ROS . Dwa kolejne czynniki montażowe SDH, SDHAF1 (Sdh6) i SDHAF3 (Sdh7 w drożdżach) wydają się być zaangażowane w dojrzewanie SDHB w celu ochrony podjednostki lub dimeru SDHA-SDHB przed uszkodzeniem klastra Fe-S spowodowanym przez ROS.

montaż kotwicy hydrofobowej składającej się z podjednostek SDHC i SDHD . Zwłaszcza w przypadku hemu b , a nawet jego funkcji. Wydaje się, że grupa prostetyczna hemu b nie jest częścią szlaku transportu elektronów w kompleksie II. Kofaktor raczej utrzymuje stabilność kotwicy.

Mechanizm

Zdjęcie 6: Mechanizm utleniania bursztynianu E2.
Zdjęcie 7: E1cb Mechanizm utleniania bursztynianu.

Utlenianie bursztynianu

Wiele wiadomo o mechanizmie utleniania bursztynianu , który obejmuje przeniesienie białka i wodorku. Połączenie mutagenezy i analizy strukturalnej identyfikuje Arg-286 podjednostki SDHA ( E. coli ) jako wahadłowiec protonów. Struktury krystaliczne enzymów z wielu organizmów pokazują, że jest to dobrze przygotowane do etapu przeniesienia protonu. Następnie istnieją dwa możliwe mechanizmy eliminacji: E2 lub E1cb. W eliminacji E2 mechanizm jest uzgodniony. Zasadowa reszta lub kofaktor deprotonuje węgiel alfa , a FAD przyjmuje wodorek z węgla beta , utleniając związany bursztynian do fumaranu - patrz obraz 6. W E1cb tworzy się półprodukt enolanowy , pokazany na obrazku 7, zanim FAD zaakceptuje wodorek . Konieczne są dalsze badania w celu określenia mechanizmu eliminacji bursztynianu w dehydrogenazie bursztynianowej. Utleniony fumaran , teraz luźno związany z miejscem aktywnym , może swobodnie opuścić białko .

Tunelowanie elektronów

Po tym, jak elektrony pochodzą z utleniania bursztynianu przez FAD , tunelują wzdłuż przekaźnika [Fe-S], aż dotrą do klastra [3Fe-4S]. Te elektrony są następnie przenoszone do oczekującej cząsteczki ubichinonu w miejscu aktywnym . System tunelowania elektronów żelaza i siarki pokazano na obrazku 9 .

Redukcja ubichinonu

Obraz 8: Mechanizm redukcji ubichinonu.
Obraz 9: Nośniki elektronów kompleksu SQR. FADH 2 , centra żelazowo-siarkowe, hem b i ubichinon.

Tlen karbonylowy O1 ubichinonu jest zorientowany w miejscu aktywnym (zdjęcie 4) przez oddziaływania wiązań wodorowych z Tyr83 podjednostki D. Obecność elektronów w klastrze siarkowo-żelazowym [3Fe-4S] indukuje ruch ubichinonu do drugiej orientacji. Ułatwia to drugie wiązaniami wodorowymi między grupą karbonylową O4 ubichinonu i Ser27 podjednostki C. Po pierwszym etapie redukcji pojedynczego elektronu , powstaje rodnik semichinonowy . Drugi elektron przybywa z klastra [3Fe-4S], aby zapewnić pełną redukcję ubichinonu do ubichinolu . Ten mechanizm ubichinonu pokazano na rycinie 8.

Hemowa grupa protetyczna

Chociaż funkcjonalność hemu w dehydrogenazie bursztynianowej jest nadal badana, niektóre badania [ przez kogo? ] stwierdzili, że pierwszy elektron dostarczony do ubichinonu przez [3Fe-4S] może tunelować tam iz powrotem między hemem a produktem pośrednim ubichinonu . W ten sposób kofaktor hemu działa jak pochłaniacz elektronów . Jego rolą jest zapobieganie interakcji półproduktu z tlenem cząsteczkowym w celu wytworzenia reaktywne formy tlenu (ROS). Grupa hemu , w stosunku do ubichinonu , jest pokazana na obrazku 4.

Zaproponowano również, że może istnieć mechanizm bramkowania, aby zapobiec tunelowaniu elektronów bezpośrednio do hemu z klastra [3Fe-4S]. Potencjalnym kandydatem jest reszta His207, która leży bezpośrednio między klastrem a hemem . His207 podjednostki B znajduje się w bezpośrednim sąsiedztwie klastra [3Fe-4S], związanego ubichinonu i hemu ; i może modulować elektronów między tymi centrami redoks.

Transfer protonów

Aby w pełni zredukować chinon w SQR, potrzebne są dwa elektrony oraz dwa protony . Argumentowano, że cząsteczka wody (HOH39) dociera do miejsca aktywnego i jest koordynowana przez His207 podjednostki B, Arg31 podjednostki C i Asp82 podjednostki D. Gatunek semichinonu jest protonowany przez protony dostarczane z HOH39, uzupełniając ubichinon redukcja do ubichinolu . His207 i Asp82 najprawdopodobniej ułatwiają ten proces. skoordynowany z pobliską histydyną , jak również tlenem karbonylowym O1 ubichinonu . Reszta histydyny zmniejsza pKa tyrozyny , czyniąc ją bardziej odpowiednią do oddawania jej protonu zredukowanemu pośredniemu ubichinonowi .

Inhibitory

Istnieją dwie odrębne klasy inhibitorów (SDHI) kompleksu II: te, które wiążą się w kieszeni bursztynianowej i te, które wiążą się w kieszeni ubichinonu. Inhibitory typu ubichinonu obejmują karboksynę i tenoilotrifluoroaceton . Inhibitory analogów bursztynianu obejmują syntetyczny związek malonian, a także półprodukty cyklu TCA, jabłczan i szczawiooctan . Rzeczywiście, szczawiooctan jest jednym z najsilniejszych inhibitorów kompleksu II. Dlaczego wspólny związek pośredni cyklu TCA miałby hamować Kompleks II, nie jest do końca zrozumiały, chociaż może odgrywać rolę ochronną w minimalizowaniu produkcji nadtlenku za pośrednictwem odwrotnego transferu elektronów przez Kompleks I. Atpenina 5a to bardzo silne inhibitory Kompleksu II naśladujące wiązanie ubichinonu.

Inhibitory typu ubichinonu są stosowane jako fungicydy w rolnictwie od lat 60. XX wieku. Karboksynę stosowano głównie do zwalczania chorób powodowanych przez podstawczaki , takich jak rdza łodygi i choroby Rhizoctonia . Niedawno opracowano inne związki o szerszym spektrum działania przeciwko szeregowi patogenów roślin, w tym boskalid , pentiopirad i fluopyram . Niektóre grzyby o znaczeniu rolniczym nie są wrażliwe na przedstawicieli nowej generacji inhibitorów typu ubichinonu.

FRAC ma grupę roboczą ds. SDHI i zaleca praktyki zarządzania odpornością .

Rola w chorobie

Podstawowa rola reduktazy bursztynianu-koenzymu Q w łańcuchu przenoszenia elektronów w mitochondriach sprawia, że ​​jest ona niezbędna w większości organizmów wielokomórkowych , wykazano również, że usunięcie tego enzymu z genomu jest śmiertelne na etapie embrionalnym u myszy.

Dehydrogenaza bursztynianowa ssaków działa nie tylko w wytwarzaniu energii mitochondrialnej , ale także odgrywa rolę w wykrywaniu tlenu i supresji guza ; i dlatego jest przedmiotem ciągłych badań.

Obniżone poziomy mitochondrialnego enzymu dehydrogenazy bursztynianowej (SDH), głównego składnika kompleksu II, obserwuje się post mortem w mózgach pacjentów z chorobą Huntingtona, a defekty metabolizmu energetycznego zidentyfikowano zarówno u przedobjawowych, jak i objawowych pacjentów HD.

Zobacz też