PSMD4
PSMD4 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Identyfikatory | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
, AF, AF-1, ASF, MCB1, Rpn10, S5A, pUB-R5, podjednostka proteasomu 26S, nie-ATPaza 4, podjednostka proteasomu 26S, receptor ubikwityny, nie-ATPaza 4 Identyfikatory | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
zewnętrzne | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Wikidane | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Podjednostka regulatorowa 4 proteasomu niebędąca ATPazą 26S , znana również jako podjednostka regulatorowa proteasomu 26S Rpn10 ( nomenklatura systematyczna ), jest enzymem kodowanym u ludzi przez gen PSMD4 . Białko to jest jedną z 19 podstawowych podjednostek, które przyczyniają się do całkowitego złożenia kompleksu proteasomu 19S.
Gen
Gen PSMD4 koduje jedną z nie-ATPazowych podjednostek podstawy regulatora 19S, podjednostkę Rpn10. Pseudogeny zostały zidentyfikowane na chromosomach 10 i 21. Ludzki PSMD4 ma 10 eksonów i znajduje się w prążku chromosomu 1q21.3.
Białko
Niebędąca ATPazą podjednostka regulatorowa ludzkiego białka 26S proteasomu 4 ma wielkość 41 kDa i składa się z 377 aminokwasów. Obliczony teoretyczny pI tego białka wynosi 4,68. Alternatywny splicing podczas ekspresji genów generuje izoformę białka, w której brakuje sekwencji aminokwasowej od 269 do 377, podczas gdy sekwencja aminokwasowa między 255 a 268 jest zastąpiona z DSDDALLKMTISQQ na GERGGIRSPGTAGC.
Złożony montaż
proteasomu 26S zwykle składa się z cząstki rdzenia 20S (CP lub proteasomu 20S) i jednej lub dwóch cząstek regulatorowych 19S (RP lub proteasomu 19S) po jednej lub obu stronach beczkowatego 20S. CP i RP dotyczą różnych cech strukturalnych i funkcji biologicznych. W skrócie, subkompleks 20S wykazuje trzy typy aktywności proteolitycznych, w tym aktywność podobną do kaspazy, podobną do trypsyny i podobną do chymotrypsyny. Te proteolityczne miejsca aktywne znajdujące się po wewnętrznej stronie komory tworzą 4 ułożone w stos pierścienie podjednostek 20S, zapobiegając przypadkowemu kontaktowi białko-enzym i niekontrolowanej degradacji białka. Cząstki regulatorowe 19S mogą rozpoznawać białko znakowane ubikwityną jako substrat degradacji, rozkładać białko do postaci liniowej, otwierać bramkę cząstki rdzeniowej 20S i kierować substan do komory proteolitycznej. Aby sprostać takiej złożoności funkcjonalnej, cząsteczka regulatorowa 19S zawiera co najmniej 18 konstytutywnych podjednostek. Podjednostki te można podzielić na dwie klasy w oparciu o zależność podjednostek od ATP, podjednostki zależne od ATP i podjednostki niezależne od ATP. Zgodnie z oddziaływaniem białek i charakterystyką topologiczną tego wielopodjednostkowego kompleksu, cząsteczka regulatorowa 19S składa się z podkompleksu zasady i pokrywy. Podstawa składa się z pierścienia sześciu ATPaz AAA (podjednostka Rpt1-6, nomenklatura systematyczna) i czterech podjednostek innych niż ATPaza ( Rpn1 , Rpn2 , Rpn10 i Rpn13). Tak więc podjednostka regulatorowa 2 (Rpn1) proteasomu białka 26S niebędąca ATPazą jest niezbędnym składnikiem tworzenia podkompleksu zasad cząstki regulatorowej 19S. Tradycyjnie uważano, że Rpn10 znajduje się między podkompleksem podstawy a podkompleksem pokrywy. Jednak ostatnie badania dostarczają alternatywnej struktury zasady 19S poprzez podejście integracyjne łączące dane z mikroskopii krioelektronowej, krystalografii rentgenowskiej, sieciowania chemicznego specyficznego dla pozostałości i kilku technik proteomicznych. Rpn2 jest sztywnym białkiem znajdującym się z boku pierścienia ATPazy, wspierającym połączenie między wieczkiem a podstawą. Rpn1 jest zmienny konformacyjnie i znajduje się na obrzeżach pierścienia ATPazy. Receptory ubikwityny Rpn10 i Rpn13 znajdują się dalej w dystalnej części kompleksu 19S, co wskazuje, że zostały one włączone do kompleksu późno podczas procesu składania.
Funkcjonować
Jako mechanizm degradacji odpowiedzialny za około 70% wewnątrzkomórkowej proteolizy, kompleks proteasomu (proteasom 26S) odgrywa kluczową rolę w utrzymaniu homeostazy proteomu komórkowego. W związku z tym nieprawidłowo sfałdowane białka i uszkodzone białka muszą być stale usuwane w celu recyklingu aminokwasów do nowej syntezy; równolegle niektóre kluczowe białka regulatorowe spełniają swoje funkcje biologiczne poprzez selektywną degradację; ponadto białka są trawione do peptydów w celu prezentacji antygenu MHC klasy I. Aby sprostać tak skomplikowanym wymaganiom procesów biologicznych poprzez przestrzenną i czasową proteolizę, substraty białkowe muszą zostać rozpoznane, rekrutowane i ostatecznie zhydrolizowane w dobrze kontrolowany sposób. Zatem cząsteczka regulatorowa 19S obejmuje szereg ważnych możliwości, aby sprostać tym wyzwaniom funkcjonalnym. Aby rozpoznać białko jako wyznaczony substrat, kompleks 19S ma podjednostki zdolne do rozpoznawania białek ze specjalnym znacznikiem degradacyjnym, ubikwitynylacją. Ma również podjednostki, które mogą wiązać się z nukleotydami (np. ATP) w celu ułatwienia asocjacji między cząstkami 19S i 20S, a także powodowania zmian potwierdzających C-końce podjednostki alfa, które tworzą wejście podstanu kompleksu 20S. Rpn10 jest jedną z podstawowych podjednostek cząstki regulatorowej 19S i bierze udział w tworzeniu podkompleksu „podstawowego”. W podstawowym podzespole Rpn1 oferuje pozycję dokowania dla podjednostki Rpn10 w jej centralnej części solenoidu, chociaż takie powiązanie z Rpn10 jest stabilizowane przez trzecią podjednostkę, Rpn2 . Rpn10 służy jako receptor dla poli-ubikwitylowanych substratów białkowych.
Znaczenie kliniczne
Proteasom i jego podjednostki mają znaczenie kliniczne z co najmniej dwóch powodów: (1) upośledzony zespół złożony lub dysfunkcyjny proteasom mogą być związane z podstawową patofizjologią określonych chorób oraz (2) mogą być wykorzystywane jako cele leków do celów terapeutycznych interwencje. Niedawno podjęto więcej wysiłków w celu rozważenia proteasomu w celu opracowania nowych markerów i strategii diagnostycznych. Lepsze i kompleksowe zrozumienie patofizjologii proteasomu powinno w przyszłości znaleźć zastosowanie kliniczne.
Proteasomy stanowią kluczowy składnik systemu ubikwityna-proteasom (UPS) i odpowiadającej mu komórkowej kontroli jakości białek (PQC). Ubikwitynacja białek , a następnie proteoliza i degradacja przez proteasom są ważnymi mechanizmami regulującymi cykl komórkowy , wzrost i różnicowanie komórek, transkrypcję genów, transdukcję sygnału i apoptozę . Następnie upośledzony montaż i funkcja kompleksu proteasomu prowadzi do zmniejszonej aktywności proteolitycznej i akumulacji uszkodzonych lub nieprawidłowo sfałdowanych rodzajów białek. Taka akumulacja białek może przyczyniać się do patogenezy i cech fenotypowych w chorobach neurodegeneracyjnych, chorobach sercowo-naczyniowych, odpowiedziach zapalnych i chorobach autoimmunologicznych oraz ogólnoustrojowych odpowiedziach na uszkodzenia DNA prowadzące do nowotwory .
Kilka badań eksperymentalnych i klinicznych wykazało, że aberracje i deregulacja UPS przyczyniają się do patogenezy kilku zaburzeń neurodegeneracyjnych i miodegeneracyjnych, w tym choroby Alzheimera , choroby Parkinsona i choroby Picka , stwardnienia zanikowego bocznego (ALS), choroby Huntingtona , choroby Creutzfeldta-Jakoba , i choroby neuronu ruchowego, choroby poliglutaminowe (PolyQ), dystrofie mięśniowe i kilka rzadkich postaci chorób neurodegeneracyjnych związanych z demencja . Jako część układu ubikwityna-proteasom (UPS), proteasom utrzymuje homeostazę białek sercowych, a tym samym odgrywa znaczącą rolę w uszkodzeniu niedokrwiennym serca , przeroście komór i niewydolności serca . Ponadto gromadzone są dowody na to, że UPS odgrywa zasadniczą rolę w transformacji złośliwej. Proteoliza UPS odgrywa główną rolę w odpowiedziach komórek nowotworowych na sygnały stymulujące, które są krytyczne dla rozwoju raka. Odpowiednio, ekspresja genów przez degradację czynników transkrypcyjnych , takich jak p53 , c-jun , c-Fos , NF-κB , c-Myc , HIF-1α, MATα2, STAT3 , białka wiążące pierwiastki sterolowe i receptory androgenowe są kontrolowane przez UPS i tym samym zaangażowane w rozwój różnych nowotworów złośliwych . Ponadto UPS reguluje degradację produktów genów supresorowych nowotworów, takich jak gruczolakowata polipowatość jelita grubego ( APC ) w raku jelita grubego, siatkówczaku (Rb). i supresor guza von Hippela-Lindaua (VHL), a także szereg innych protoonkogeny ( Raf , Myc , Myb , Rel , Src , Mos , ABL ). UPS bierze również udział w regulacji reakcji zapalnych. Ta aktywność jest zwykle przypisywana roli proteasomów w aktywacji NF-κB, który dodatkowo reguluje ekspresję cytokin prozapalnych , takich jak TNF-α , IL-β, IL-8 , cząsteczki adhezyjne ( ICAM-1 , VCAM-1 , P-selektyna ) oraz prostaglandyny i tlenek azotu (NO). Dodatkowo UPS odgrywa również rolę w odpowiedziach zapalnych jako regulatory proliferacji leukocytów, głównie poprzez proteolizę cyklin i degradację CDK . Wreszcie, pacjenci z chorobami autoimmunologicznymi z SLE , zespołem Sjögrena i reumatoidalnym zapaleniem stawów (RZS) wykazują głównie krążące proteasomy, które można zastosować jako biomarkery kliniczne .
Interakcje
Wykazano, że PSMD4 oddziałuje z RAD23A i RAD23B .
Dalsza lektura
- Coux O, Tanaka K, Goldberg AL (1996). „Struktura i funkcje proteasomów 20S i 26S”. rok Wielebny Biochem . 65 : 801–47. doi : 10.1146/annurev.bi.65.070196.004101 . PMID 8811196 .
- Goff SP (2003). „Śmierć przez dezaminację: nowy system restrykcji gospodarza dla HIV-1” . komórka . 114 (3): 281–3. doi : 10.1016/S0092-8674(03)00602-0 . PMID 12914693 . S2CID 16340355 .
- Lönnroth I, Lange S (1986). „Oczyszczanie i charakterystyka czynnika przeciwwydzielniczego: białka w ośrodkowym układzie nerwowym i jelitach, które hamuje nadmierne wydzielanie jelitowe wywołane przez toksynę cholery”. Biochim. Biofiza. Akta . 883 (1): 138–44. doi : 10.1016/0304-4165(86)90144-3 . PMID 3524692 .
- Johansson E, Lönnroth I, Lange S, Jonson I, Jennische E, Lönnroth C (1995). „Klonowanie molekularne i ekspresja białka przysadki mózgowej modulującego wydzielanie płynu jelitowego” . J. Biol. chemia . 270 (35): 20615-20. doi : 10.1074/jbc.270.35.20615 . PMID 7657640 .
- Seeger M, Ferrell K, Frank R, Dubiel W (1997). „HIV-1 tat hamuje proteasom 20 S i jego aktywację za pośrednictwem regulatora 11 S” . J. Biol. chemia . 272 (13): 8145–8. doi : 10.1074/jbc.272.13.8145 . PMID 9079628 .
- Anand G, Yin X, Shahidi AK, Grove L, Prochownik EV (1997). „Nowa regulacja białka helisa-pętla-helisa Id1 przez S5a, podjednostkę proteasomu 26 S” . J. Biol. chemia . 272 (31): 19140–51. doi : 10.1074/jbc.272.31.19140 . PMID 9235903 .
- Młody P, Deveraux Q, Beal RE, Pickart CM, Rechsteiner M (1998). „Charakterystyka dwóch miejsc wiązania poliubikwityny w podjednostce proteazy 26 S 5a” . J. Biol. chemia . 273 (10): 5461–7. doi : 10.1074/jbc.273.10.5461 . PMID 9488668 .
- Madani N, Kabat D (1998). „Endogenny inhibitor ludzkiego wirusa niedoboru odporności w ludzkich limfocytach zostaje pokonany przez wirusowe białko Vif” . J. Wirol . 72 (12): 10251–5. doi : 10.1128/JVI.72.12.10251-10255.1998 . PMC 110608 . PMID 9811770 .
- Simon JH, Gaddis NC, Fouchier RA, Malim MH (1998). „Dowody na nowo odkryty komórkowy fenotyp anty-HIV-1”. Nat. Med . 4 (12): 1397–400. doi : 10.1038/3987 . PMID 9846577 . S2CID 25235070 .
- Hiyama H, Yokoi M, Masutani C, Sugasawa K, Maekawa T, Tanaka K, Hoeijmakers JH, Hanaoka F (1999). „Interakcja hHR23 z S5a. Domena podobna do ubikwityny hHR23 pośredniczy w interakcji z podjednostką S5a proteasomu 26 S” . J. Biol. chemia . 274 (39): 28019–25. doi : 10.1074/jbc.274.39.28019 . PMID 10488153 .
- Tateishi K, Misumi Y, Ikehara Y, Miyasaka K, Funakoshi A (1999). „Klonowanie molekularne i ekspresja szczurzego czynnika przeciwwydzielniczego i jego lokalizacja wewnątrzkomórkowa”. Biochem. Biol komórkowy . 77 (3): 223-8. doi : 10.1139/bcb-77-3-223 . PMID 10505793 .
- Tanahashi N, Murakami Y, Minami Y, Shimbara N, Hendil KB, Tanaka K (2000). „Proteasomy hybrydowe. Indukcja przez interferon gamma i udział w proteolizie zależnej od ATP” . J. Biol. chemia . 275 (19): 14336–45. doi : 10.1074/jbc.275.19.14336 . PMID 10799514 .
- Mulder LC, Muesing MA (2000). „Degradacja integrazy HIV-1 przez szlak reguły N-końca” . J. Biol. chemia . 275 (38): 29749–53. doi : 10.1074/jbc.M004670200 . PMID 10893419 .
- Kawahara H, Kasahara M, Nishiyama A, Ohsumi K, Goto T, Kishimoto T, Saeki Y, Yokosawa H, Shimbara N, Murata S, Chiba T, Suzuki K, Tanaka K (2000). „Regulowany rozwojowo, alternatywny splicing genu Rpn10 generuje wiele form proteasomów 26S” . EMBO J. 19 (15): 4144–53. doi : 10.1093/emboj/19.15.4144 . PMC 306610 . PMID 10921894 .
- Connell P, Ballinger CA, Jiang J, Wu Y, Thompson LJ, Höhfeld J, Patterson C (2001). „Wspólny opiekun CHIP reguluje decyzje dotyczące segregacji białek, w których pośredniczą białka szoku cieplnego”. Nat. Biol komórkowy . 3 (1): 93–6. doi : 10.1038/35050618 . PMID 11146632 . S2CID 19161960 .
- Kamitani T, Kito K, Fukuda-Kamitani T, Yeh ET (2002). „Kierowanie NEDD8 i jego koniugatów do degradacji proteasomów przez NUB1” . J. Biol. chemia . 276 (49): 46655–60. doi : 10.1074/jbc.M108636200 . PMID 11585840 .
- Walters KJ, Kleijnen MF, Goh AM, Wagner G, Howley PM (2002). „Badania strukturalne interakcji między białkami z rodziny ubikwityny a podjednostką proteasomu S5a”. Biochemia . 41 (6): 1767–77. doi : 10.1021/bi011892y . PMID 11827521 .
- Sheehy AM, Gaddis NC, Choi JD, Malim MH (2002). „Izolacja ludzkiego genu, który hamuje zakażenie HIV-1 i jest tłumiony przez wirusowe białko Vif”. Natura . 418 (6898): 646–50. Bibcode : 2002Natur.418..646S . doi : 10.1038/natura00939 . PMID 12167863 . S2CID 4403228 .