PSMB9
Identyfikatory | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
PSMB9 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
, LMP2, PSMB6i, RING12, beta1i, podjednostka proteasomu beta 9, PRAAS3, podjednostka proteasomu 20S beta 9 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Identyfikatory zewnętrzne | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Wikidane | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Podjednostka beta proteasomu typu 9 , znana jako podjednostka proteasomu 20S beta-1i, jest białkiem , które u ludzi jest kodowane przez gen PSMB9 .
Białko to jest jedną z 17 podstawowych podjednostek (podjednostki alfa 1-7, konstytutywne podjednostki beta 1-7 i podjednostki indukowalne, w tym beta1i , beta2i , beta5i ), które przyczyniają się do całkowitego złożenia kompleksu proteasomu 20S . W szczególności podjednostka beta proteasomu typu 5 wraz z innymi podjednostkami beta składa się w dwa pierścienie heptameryczne, a następnie w komorę proteolityczną do degradacji substratu. Białko to wykazuje aktywność „podobną do trypsyny” i jest zdolne do rozszczepiania po zasadowych resztach peptydu. Proteasom eukariotyczny uznanych białek ulegających rozkładowi, w tym białek uszkodzonych do celów kontroli jakości białek lub kluczowych składników białek regulatorowych dla dynamicznych procesów biologicznych. Konstytutywne podjednostki beta1, beta2 i beta 5 (nazewnictwo systematyczne) można zastąpić ich indukowalnymi odpowiednikami beta1i, 2i i 5i, gdy komórki są traktowane interferonem-γ. Powstały kompleks proteasomu staje się tak zwanym immunoproteasomem. Podstawową funkcją zmodyfikowanego kompleksu proteasomu, immunoproteasomu, jest przetwarzanie licznych epitopów komórek T ograniczonych do MHC klasy I.
Struktura
Gen
Gen PSMB9 koduje członka rodziny proteasomów typu B, znanej również jako rodzina T1B, czyli podjednostkę beta rdzenia 20S. Gen ten znajduje się w regionie klasy II MHC ( główny kompleks zgodności tkankowej). Ekspresja tego genu jest indukowana przez interferon gamma i ten produkt genu zastępuje podjednostkę katalityczną 1 (podjednostka beta 6 proteasomu) w immunoproteasomie. Do wytworzenia dojrzałej podjednostki wymagana jest obróbka proteolityczna. Zidentyfikowano dwa alternatywne transkrypty kodujące różne izoformy; obie izoformy są przetwarzane w celu uzyskania tej samej dojrzałej podjednostki. Ludzki gen PSMB9 ma 6 eksonów i znajduje się w prążku chromosomu 6p21.3.
Białko
Podjednostka beta ludzkiego proteasomu białka typu 9 ma wielkość 21 kDa i składa się ze 199 aminokwasów. Obliczony teoretyczny pI tego białka wynosi 4,80.
Złożony montaż
Proteasom jest multikatalitycznym kompleksem proteinazy o wysoce uporządkowanej strukturze rdzenia 20S . Ta struktura rdzenia w kształcie beczki składa się z 4 osiowo ułożonych pierścieni z 28 nieidentycznych podjednostek: każdy z dwóch pierścieni końcowych składa się z 7 podjednostek alfa, a każdy z dwóch pierścieni centralnych składa się z 7 podjednostek beta. Każda z trzech podjednostek beta ( beta1 , beta2 , beta5 ) zawiera aktywne miejsce proteolityczne i ma różne preferencje dotyczące substratów. Proteasomy są rozmieszczone w komórkach eukariotycznych w wysokim stężeniu i rozszczepiają peptydy w ATP / ubikwityny w szlaku nielizosomalnym .
Funkcjonować
Funkcje białka są wspierane przez jego trzeciorzędową strukturę i interakcje z partnerami stowarzyszonymi. Jako jedna z 28 podjednostek proteasomu 20S, podjednostka beta typu 2 proteasomu białkowego przyczynia się do tworzenia środowiska proteolitycznego do degradacji substratu. Dowody na struktury krystaliczne wyizolowanego kompleksu proteasomu 20S pokazują, że dwa pierścienie podjednostek beta tworzą komorę proteolityczną i utrzymują wszystkie swoje aktywne miejsca proteolizy w komorze. Jednocześnie pierścienie podjednostek alfa tworzą wejście dla substratów wchodzących do komory proteolitycznej. W inaktywowanym kompleksie proteasomu 20S brama do wewnętrznej komory proteolitycznej jest strzeżona przez N-końcowy ogony określonej podjednostki alfa. Ta unikalna konstrukcja struktury zapobiega przypadkowemu zetknięciu się aktywnych miejsc proteolitycznych z substratem białkowym, co sprawia, że degradacja białka jest procesem dobrze regulowanym. Sam kompleks proteasomu 20S jest zwykle funkcjonalnie nieaktywny. Zdolność proteolityczna cząstki rdzeniowej 20S (CP) może zostać aktywowana, gdy CP połączy się z jedną lub dwiema cząstkami regulatorowymi (RP) po jednej lub obu stronach pierścieni alfa. Te cząstki regulatorowe obejmują kompleksy proteasomu 19S, kompleks proteasomu 11S itp. Po asocjacji CP-RP potwierdzenie niektórych podjednostek alfa ulegnie zmianie iw konsekwencji spowoduje otwarcie bramy wejściowej substratu. Oprócz RP, proteasomy 20S można również skutecznie aktywować za pomocą innych łagodnych zabiegów chemicznych, takich jak ekspozycja na niskie poziomy dodecylosiarczanu sodu (SDS) lub NP-14.
Podjednostka beta-5i proteasomu 20S (nazewnictwo systematyczne) jest pierwotnie wyrażana jako prekursor z 276 aminokwasami. Fragment 72 aminokwasów na N-końcu peptydu jest niezbędny do prawidłowego fałdowania białka i późniejszego złożenia kompleksu. Na końcowym etapie składania kompleksu N-końcowy fragment podjednostki beta5 jest rozszczepiany, tworząc dojrzałą podjednostkę beta5i kompleksu 20S. Podczas składania podstawowego przetwarzanie proteolityczne w celu wytworzenia dojrzałej podjednostki. Podjednostka beta5i występuje tylko w immunoproteasomie i jest zastępowana przez podjednostkę beta5 (podjednostka beta 5 proteasomu) w konstytutywnym kompleksie proteasomu 20S.
Znaczenie kliniczne
Proteasom i jego podjednostki mają znaczenie kliniczne z co najmniej dwóch powodów: (1) upośledzony zespół złożony lub dysfunkcyjny proteasom mogą być związane z podstawową patofizjologią określonych chorób oraz (2) mogą być wykorzystywane jako cele leków do celów terapeutycznych interwencje. Niedawno podjęto więcej wysiłków w celu rozważenia proteasomu w celu opracowania nowych markerów i strategii diagnostycznych. Lepsze i kompleksowe zrozumienie patofizjologii proteasomu powinno w przyszłości znaleźć zastosowanie kliniczne.
Proteasomy stanowią kluczowy składnik systemu ubikwityna-proteasom (UPS) i odpowiadającej mu komórkowej kontroli jakości białek (PQC). Ubikwitynacja białek , a następnie proteoliza i degradacja przez proteasom są ważnymi mechanizmami regulującymi cykl komórkowy , wzrost i różnicowanie komórek , transkrypcję genów, transdukcję sygnału i apoptozę . Następnie upośledzony montaż i funkcja kompleksu proteasomu prowadzi do zmniejszonej aktywności proteolitycznej i akumulacji uszkodzonych lub nieprawidłowo sfałdowanych rodzajów białek. Taka akumulacja białek może przyczyniać się do patogenezy i cech fenotypowych w chorobach neurodegeneracyjnych, chorobach sercowo-naczyniowych, odpowiedziach zapalnych i chorobach autoimmunologicznych oraz ogólnoustrojowych odpowiedziach na uszkodzenia DNA prowadzące do nowotworów złośliwych .
Kilka badań eksperymentalnych i klinicznych wykazało, że aberracje i deregulacja UPS przyczyniają się do patogenezy kilku zaburzeń neurodegeneracyjnych i miodegeneracyjnych, w tym choroby Alzheimera , choroby Parkinsona i choroby Picka , stwardnienia zanikowego bocznego (ALS), choroby Huntingtona , choroby Creutzfeldta-Jakoba , i choroby neuronu ruchowego, choroby poliglutaminowe (PolyQ), dystrofie mięśniowe i kilka rzadkich postaci chorób neurodegeneracyjnych związanych z demencja . Jako część systemu ubikwitynowo-proteasomowego (UPS) , proteasom utrzymuje homeostazę białek serca, a tym samym odgrywa znaczącą rolę w uszkodzeniu niedokrwiennym serca , przeroście komór i niewydolności serca . Ponadto gromadzone są dowody na to, że UPS odgrywa zasadniczą rolę w transformacji złośliwej. Proteoliza UPS odgrywa główną rolę w odpowiedziach komórek nowotworowych na sygnały stymulujące, które są krytyczne dla rozwoju raka. Odpowiednio, ekspresja genów przez degradację czynników transkrypcyjnych , takich jak p53 , c-jun , c-Fos , NF-κB , c-Myc , HIF-1α, MATα2, STAT3 , białka wiążące pierwiastki sterolowe i receptory androgenowe są kontrolowane przez UPS i tym samym zaangażowane w rozwój różnych nowotworów złośliwych . Ponadto UPS reguluje degradację produktów genów supresorowych nowotworów, takich jak gruczolakowata polipowatość jelita grubego ( APC ) w raku jelita grubego, siatkówczaku (Rb). i supresor guza von Hippela-Lindaua (VHL), a także szereg innych protoonkogeny ( Raf , Myc , Myb , Rel , Src , Mos , Abl ). UPS bierze również udział w regulacji reakcji zapalnych. Ta aktywność jest zwykle przypisywana roli proteasomów w aktywacji NF-κB, który dodatkowo reguluje ekspresję cytokin prozapalnych , takich jak TNF-α , IL-β, IL-8 , cząsteczki adhezyjne ( ICAM-1 , VCAM-1 , P-selektyna ) oraz prostaglandyny i tlenek azotu (NO). Dodatkowo UPS odgrywa również rolę w reakcjach zapalnych jako regulatory proliferacji leukocytów, głównie poprzez proteolizę cyklin i degradację CDK . Wreszcie, pacjenci z chorobami autoimmunologicznymi z SLE , zespołem Sjögrena i reumatoidalnym zapaleniem stawów (RZS) wykazują głównie krążące proteasomy, które można zastosować jako biomarkery kliniczne.
Podczas przetwarzania antygenu dla głównego kompleksu zgodności tkankowej (MHC) klasy I, proteasom jest głównym mechanizmem degradacji, który rozkłada antygen i prezentuje powstałe peptydy cytotoksycznym limfocytom T. Uważa się, że immunoproteasom odgrywa kluczową rolę w poprawie jakości i ilości generowanych ligandów klasy I.
Znaczenie kliniczne białka PSMB9 można znaleźć głównie w obszarach chorób zakaźnych , autoimmunologicznych i onkologicznych . Na przykład potwierdzono, że mRNA kodujący PSMB9 (wraz z CFD , MAGED1 , PRDX4 i FCGR3B ) ulega różnej ekspresji u pacjentów, u których rozwinęły się objawy kliniczne związane z łagodną postacią choroby Denga gorączką oraz u pacjentów, u których wystąpiły objawy kliniczne związane z ciężką postacią dengi. Badanie sugeruje, że ten panel ekspresji genów może służyć jako biomarkery rokowania klinicznego w gorączce krwotocznej Denga. Dalsze badania wskazują również na rolę PMSB9, w panelu z 9 innymi genami (Zbp1, Mx2, Irf7, Lfi47, Tapbp, Timp1, Trafd1, Tap2) w opracowywaniu szczepionek przeciw grypie oraz w diagnostyce choroby autoimmunologicznej Zespół Sjögrena w w połączeniu z 18 innymi genami (EPSTI1, IFI44, IFI44L, IFIT1 , IFIT2 , IFIT3 , MX1 , OAS1 , SAMD9L, STAT1 , HERC5 , EV12B, CD53 , SELL , HLA-DQA1 , PTPRC , B2M i TAP2 ). Jeśli chodzi o onkologię, PSMB9 w połączeniu z innymi genami zaangażowanymi w procesy odpowiedzi immunologicznej ( TAP1 , PSMB8 , PSMB9, HLA-DQB1 , HLA-DQB2 , HLA-DMA i HLA-DOA ) mogą stanowić kompleksową ocenę wyniku klinicznego w ocenach metylacji guza nabłonkowego raka jajnika . Badanie sugeruje, że odpowiedź immunologiczna za pośrednictwem epigenetyki jest predyktorem nawrotu i prawdopodobnie odpowiedzi na leczenie surowiczego nabłonkowego raka jajnika o wysokim stopniu złośliwości .
Dalsza lektura
- Coux O, Tanaka K, Goldberg AL (1996). „Struktura i funkcje proteasomów 20S i 26S”. Roczny przegląd biochemii . 65 : 801–47. doi : 10.1146/annurev.bi.65.070196.004101 . PMID 8811196 .
- Goff SP (sierpień 2003). „Śmierć przez deaminację: nowy system restrykcji gospodarza dla HIV-1” . komórka . 114 (3): 281–3. doi : 10.1016/S0092-8674(03)00602-0 . PMID 12914693 . S2CID 16340355 .
- Früh K, Yang Y, Arnold D, Chambers J, Wu L, Waters JB, Spies T, Peterson PA (listopad 1992). „Alternatywne wykorzystanie egzonów i przetwarzanie głównych podjednostek proteasomu kodowanych przez kompleks zgodności tkankowej” . Journal of Biological Chemistry . 267 (31): 22131–40. doi : 10.1016/S0021-9258(18)41645-6 . PMID 1429565 .
- Beck S, Kelly A, Radley E, Khurshid F, Alderton RP, Trowsdale J (listopad 1992). „Analiza sekwencji DNA 66 kb ludzkiego regionu MHC klasy II kodującego grupę genów do przetwarzania antygenu”. Dziennik biologii molekularnej . 228 (2): 433–41. doi : 10.1016/0022-2836(92)90832-5 . PMID 1453454 .
- Martinez CK, Monako JJ (październik 1991). „Homologia podjednostek proteasomu do głównego genu LMP połączonego z kompleksem zgodności tkankowej”. Natura . 353 (6345): 664–7. Bibcode : 1991Natur.353..664M . doi : 10.1038/353664a0 . PMID 1681432 . S2CID 4251139 .
- Kristensen P, Johnsen AH, Uerkvitz W, Tanaka K, Hendil KB (grudzień 1994). „Podjednostki ludzkiego proteasomu z dwuwymiarowych żeli zidentyfikowane przez częściowe sekwencjonowanie”. Komunikaty dotyczące badań biochemicznych i biofizycznych . 205 (3): 1785–9. doi : 10.1006/bbrc.1994.2876 . PMID 7811265 .
- Singal DP, Ye M, Quadri SA (styczeń 1995). „Główny kodowany przez zgodność tkankową ludzki proteasom LMP2. Organizacja genomowa i nowa forma mRNA” . Journal of Biological Chemistry . 270 (4): 1966–70. doi : 10.1074/jbc.270.4.1966 . PMID 7829535 .
- Beck S, Abdulla S, Alderton RP, Glynne RJ, Gut IG, Hosking LK, Jackson A, Kelly A, Newell WR, Sanseau P, Radley E, Thorpe KL, Trowsdale J (styczeń 1996). „Dynamika ewolucyjna sekwencji niekodujących w regionie klasy II ludzkiego MHC”. Dziennik biologii molekularnej . 255 (1): 1–13. doi : 10.1006/jmbi.1996.0001 . PMID 8568858 .
- Hisamatsu H, Shimbara N, Saito Y, Kristensen P, Hendil KB, Fujiwara T, Takahashi E, Tanahashi N, Tamura T, Ichihara A, Tanaka K (kwiecień 1996). „Nowo zidentyfikowana para podjednostek proteasomów regulowanych wzajemnie przez interferon gamma” . The Journal of Experimental Medicine . 183 (4): 1807–16. doi : 10.1084/jem.183.4.1807 . PMC 2192534 . PMID 8666937 .
- Schmidtke G, Kraft R, Kostka S, Henklein P, Frömmel C, Löwe J, Huber R, Kloetzel PM, Schmidt M (grudzień 1996). „Analiza biogenezy proteasomu ssaków 20S: dojrzewanie podjednostek beta jest uporządkowanym dwuetapowym mechanizmem obejmującym autokatalizę” . Dziennik EMBO . 15 (24): 6887–98. doi : 10.1002/j.1460-2075.1996.tb01081.x . PMC 452515 . PMID 9003765 .
- Seeger M, Ferrell K, Frank R, Dubiel W (marzec 1997). „HIV-1 tat hamuje proteasom 20 S i jego aktywację za pośrednictwem regulatora 11 S” . Journal of Biological Chemistry . 272 (13): 8145–8. doi : 10.1074/jbc.272.13.8145 . PMID 9079628 .
- Cruz M, Elenich LA, Smolarek TA, Menon AG, Monaco JJ (listopad 1997). „Sekwencja DNA, lokalizacja chromosomalna i ekspresja w tkankach genu podjednostki mysiego proteasomu lmp10 (Psmb10)” . Genomika . 45 (3): 618–22. doi : 10.1006/geno.1997.4977 . PMID 9367687 .
- Madani N, Kabat D (grudzień 1998). „Endogenny inhibitor ludzkiego wirusa niedoboru odporności w ludzkich limfocytach zostaje pokonany przez wirusowe białko Vif” . Dziennik wirusologii . 72 (12): 10251–5. doi : 10.1128/JVI.72.12.10251-10255.1998 . PMC 110608 . PMID 9811770 .
- Simon JH, Gaddis NC, Fouchier RA, Malim MH (grudzień 1998). „Dowody na nowo odkryty komórkowy fenotyp anty-HIV-1”. Medycyna natury . 4 (12): 1397–400. doi : 10.1038/3987 . PMID 9846577 . S2CID 25235070 .
- Schmidt M, Zantopf D, Kraft R, Kostka S, Preissner R, Kloetzel PM (kwiecień 1999). „Informacje o sekwencji w prosekwencjach proteasomów pośredniczą w skutecznej integracji podjednostek beta z kompleksem 20 S proteasomu”. Dziennik biologii molekularnej . 288 (1): 117–28. doi : 10.1006/jmbi.1999.2660 . PMID 10329130 .
- Elenich LA, Nandi D, Kent AE, McCluskey TS, Cruz M, Iyer MN, Woodward EC, Conn CW, Ochoa AL, Ginsburg DB, Monaco JJ (wrzesień 1999). „Pełna podstawowa struktura mysich proteasomów 20S”. Immunogenetyka . 49 (10): 835–42. doi : 10.1007/s002510050562 . PMID 10436176 . S2CID 20977116 .
- Mulder LC, Muesing MA (wrzesień 2000). „Degradacja integrazy HIV-1 przez szlak reguły N-końca” . Journal of Biological Chemistry . 275 (38): 29749–53. doi : 10.1074/jbc.M004670200 . PMID 10893419 .